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Konfokale Laser-Scanning-Bildgebung
A Line Objektiv und das FV3000 Mikroskop/Ixplore

Silikonimmersionsobjektive

Silikonimmersionsobjektive sind für die Bildgebung von Lebendzellen und Lebendgewebe optimiert. Durch die richtige Wahl des Brechungsindexes werden Bilder klarer und heller und Zeitraffer-Beobachtungen zuverlässiger und weniger komplex, da Silikonöl bei 37 °C nicht trocknet. Da der Brechungsindex von Silikonimmersionsöl (ne = 1,40) dem des Clearing-Reagens SCALEVIEW-A2 (ne = 1,38) nahe kommt, eignen sich Silikonimmersionsobjektive auch für die Beobachtung von SCALEVIEW-A2-Proben.

Silikonimmersionsobjektive

Image data courtesy of Motokazu Uchigashima, M.D., Ph.D., Masahiko Watanabe, M.D., Ph.D., Departments of Anatomy, Hokkaido University Graduate School of Medicine
Probe: ScaleA2-behandelter Neocortex, VGluT1/grün, VGluT2/rot, MAP2/blau

60X-Silikonimmersionsobjektiv und 60X-Ölimmersionsobjektiv

Durch Anpassung des Brechungsindexes der Probe an den des Immersionsmediums ermöglicht das A Line Silikonobjektiv (UPLSAPO60XS2) eine tiefere Bildgebung.
 

Bilddaten mit freundlicher Genehmigung von Motokazu Uchigashima, MD., Ph.D., Masahiko Watanabe, M.D., Ph.D.,
Departments of Anatomy, Hokkaido University Graduate School of Medicine, Japan

Mehr über Lebendzell-Bildgebung erfahren

Dreidimensionale Betrachtung der Gallengangstruktur in Mauslebern mit einem 30X-Objektiv (UPLSAPO30XS)

Es wurden die Gallenstrukturen von Klf5-LKO-Mäusen und Kontrollmäusen verglichen. Mit dem FV3000 und dem 30x Silikonimmersionsobjektiv wurden bei Beobachtung mit hoher Auflösung unter Beibehaltung des weiten Sichtfeldes in mit SeeDB behandelten Lebergewebeproben von 200 μm Dicke tomographische Bilderserien (Z-Achsintervall 1 μm) des Gallengewebes (grüner Gallen-Epithelzellmarker CK19) aufgenommen. In Klf5-LKO-Mäusen wurden CK19-Zellcluster (weißer Pfeil) beobachtet, die räumlich vom Gallengang getrennt waren.

Kontrollmaus
KIf5-LKO-Maus
.
,

Maßstab: 50 μm

Auswahlhilfe für Silikonimmersionsobjektive

Arbeitsabstand
(mm)
Vergrößerung Objektivfeldnummer* Numerische Apertur Tauchtechnik Anwendungen
UPLSAPO100XS 0.2 100X 22 1.35 Silikonöl Hohe Auflösung für die subzelluläre Bildgebung
UPLSAPO60XS2 0.3 60X 22 1.30 Silikonöl Hochauflösende Langzeit-Aufnahme von Einzelzellen im Zeitraffer
UPLSAPO40XS 0.3 40X 22 1.25 Silikonöl Mehrzellen-Aufnahme im Submikron-Sichtfeld
UPLSAPO30XS 0.8 30X 22 1.05 Silikonöl Tiefere Gewebeaufnahme mit größerem Sichtfeld

*Maximal durch das Okular beobachtbare Feldnummer.

Super-korrigierte 60X-Objektive

PLAPON60XOSC2
UPLXAPO60XO (links) versus PLAPON60XOSC2 (rechts)
Vergleich der chromatischen Aberration, die mit FLUOVIEW FV3000 unter Verwendung von mehrfarbigen fluoreszierenden Mikrokügelchen gemessen wurde.

Bessere Bildgebung mit super-korrigierter chromatischer Aberration und hoher numerischer Apertur

Kolokalisierte Fluoreszenzsignale sind ein Problem, dessen Lösung ein Objektiv mit hervorragender optischer Konstruktion zur Korrektur der Farbverschiebungen (Aberration) erfordert. Das super-korrigierte 60X-Objektiv mit hoher numerischer Apertur minimiert die chromatische Aberration im Spektrum von 405 nm bis 650 nm bis zur technischen Grenze. In diesem Bereich wird eine axiale chromatische Aberration von 0,1 μm oder weniger erreicht, für jedes Objektiv wird ein Messdatenblatt mitgeliefert. Dieses Objektiv kann 2D- und 3D-Bilder mit hervorragender Zuverlässigkeit und Genauigkeit erfassen und die Kolokalisationsanalyse verbessern. Sparen Sie Zeit und Ressourcen bei Markierungsexperimenten mit mehreren Farben, ohne dass nach der Verarbeitung Anpassungen erforderlich werden.

Technische Angaben zu super-korrigierten 60X-Objektiven

Arbeitsabstand
(mm)
Vergrößerung Objektivfeldnummer* Numerische Apertur Tauchtechnik
PLAPON60XOSC2 0.12 60X 22 1.4 Öl

*Maximal durch das Okular beobachtbare Feldnummer.

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*Bannerbild: Mit freundlicher Genehmigung von
Division of Mammalian Development, Genetic Strains Research Center, National Institute of Genetics, Dr. Hajime Okada Laboratory of Stem Cell Therapy, Institute for Quantitative Biosciences, The University of Tokyo, Project Associate Professor, Dr. Tohru Itoh

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