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Galerie d’images

créées par le système d’imagerie

numérique APX100

Le système d’imagerie numérique APEXVIEW APX100 prend en charge un grand nombre de
méthodes d’observation. Grâce à ses fonctions conviviales et pratiques et à son logiciel intuitif,
il améliore l’efficacité de diverses applications de recherche sans compromettre la qualité des images.

Cette galerie présente des exemples d’images prises dans diverses applications avec le système d’imagerie
numérique APX100. Si vous avez des questions sur la façon dont vous pouvez l’utiliser dans vos applications, contactez-nous !

Fluorescence multicanal

Fluorescence multicanal

  • Observez la fluorescence d’échantillons marqués avec plusieurs fluorophores et en combinaison avec d’autres modes d’imagerie comme le contraste de phase ou le contraste de gradient.
  • Il est possible d’utiliser jusqu’à huit cubes de miroirs pour s’adapter à de nombreuses conditions expérimentales.
  • Prenez rapidement des images dans des conditions optimales grâce aux étalonnages automatisés du temps d’exposition et du décalage de plan focal pour chaque canal.
  • L’appareil affiche les images fusionnées de manière impeccable pour une qualité d’image finale irréprochable.

Cellules endothéliales d’artères pulmonaires bovines.Marquage : anti-α-tubuline de souris, IgG de chèvre antisouris BODIPY FL, phalloïdine Texas Red-X, DAPI

Cervelet de rat marqué avec cinq fluorophores

Acquerrez facilement des images de fluorescence multicanal à des longueurs d’onde allant des UV au proche infrarouge.

Fluorophores utilisés : Hoechst (bleu), GFAP (vert), MAP2 (orange), calbindine (rouge), MBP (magenta)

Objectif : UPLXAPO4X

Cervelet de rat marqué avec cinq fluorophores
Assemblage

Assemblage

  • Faites l’acquisition d’images d’échantillons de tissus entiers ou évaluez rapidement l’état des flacons de culture cellulaire sur de grandes zones en haute résolution.
  • L’assemblage de haute précision rend presque invisibles les jonctions entre les images dans les modes d’acquisition en fond clair et de fluorescence.
  • Même les échantillons inclinés ou irréguliers peuvent être assemblés de manière impeccable.

Image de poumon de souris prise avec un objectif UPLXAPO4X. Coloration : HE.

Empilement Z

  • Faites l’acquisition de plusieurs images de plusieurs plans focaux pour pouvoir observer les échantillons épais.
  • Créez des images entièrement nettes en quelques clics.
  • Obtenez des images nettes présentant un bon piqué grâce à la déconvolution TruSight™ 3D.

Localisation subcellulaire de la protéine centrosomale kendrine/péricentrine. Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation du Dr Kazuhiko Matsuo, Division of Developmental Biology and Anatomy, Department of Anatomy, Kyoto Prefectural University of Medicine.

Empilement Z

Imagerie à intervalles

  • Enregistrez en continu l’évolution d’une cellule vivante ou de toute une culture de cellules au fil du temps.
  • Un mécanisme intégré d’isolation contre les vibrations et un incubateur en option assurent une acquisition d’images stable.
  • En associant le système à l’unité d’administration de médicament en option, vous pouvez observer la réponse des cellules en temps réel immédiatement après l’administration d’un médicament.

Test de cicatrisation

Imagerie à intervalles d’un test de cicatrisation de cellules endothéliales aortiques humaines (2 jours).
Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation du Dr Kazutaka Ueda, Department of Cardiovascular Medicine, The University of Tokyo Hospital.

Ovule de souris fécondé

Quatre heures d’observation à intervalles d’un ovule de souris fécondé


Effets d’un antioxydant sur les mitochondries

Les mitochondries qui sont oxydées (augmentation de l’intensité de la fluorescence) par l’addition de H2O2 sont ensuite réduites (diminution de l’intensité de la fluorescence) par l’effet de l’antioxydant.

  • Cellule : cellule HeLa
  • Marquage : OxiORANGE
  • Objectif : UPLXAPO40X
  • Intervalles de temps : 3 minutes
  • Durée : 1 heure

Profil d’intensité

Profil d’intensité


Imagerie multicolore de cellules RBL-2H3 en cours de migration

Trois types de cellules RBL-2H3 traitées ont été mélangés, et leur migration a été observée au moyen d’une imagerie à intervalles multicolore. L’analyse du suivi des cellules a montré que les cellules migraient de façon similaire avec tous les traitements.

  • Cellule : cellules RBL-2H3
  • Marquage : DiO (vert), DiI (jaune), DiD (rouge)
  • Objectif : UPLXAPO20X
  • Intervalles de temps : 30 minutes
  • Durée : 18 heures

Distance parcourue : (en moyenne) μm

Distance parcourue (en moyenne) : μm

Imagerie de fluorescence

Tubuline et noyau de cellules BSC-1

Image d’application de la colocalisation de NeuN et γ-H2AX dans un cerveau de singe

Pollen de noisetier

Tubuline et noyau de cellules BSC-1

Marquage : immunocytochimie, bleu : noyau de cellule, rouge : tubuline

Colocalisation de NeuN et γ-H2AX dans un cerveau de singe

Marquage : immunocytochimie

Données d’image reproduites avec l’aimable autorisation de Rui Han, Laboratoire du professeur Xiaojiang-Li, Guangdong-HongKong-Macau Institute of CNS Regeneration, université JINAN.

Pollen de noisetier

Autofluorescence, image prise avec un objectif UPLXAPO60X à huile. Traitée avec la déconvolution TruSight.

Image d’application de glande mammaire de souris

Image d’application de la tubuline et du noyau de cellules BSC-1

Image d’application d’un sphéroïde de cellules HeLa clarifié

Glande mammaire de souris adulte (Krt14/Krt8)

Marquage : immunocytochimie

Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation de Chunye Liu, Laboratoire du professeur Yi Zeng, Center of Excellence in Molecular Cell Science, CAS.

Tubuline et noyau de cellules BSC-1

Marquage : immunocytochimie, blanc : noyau de cellule, cyan : tubuline

Sphéroïde de cellules HeLa clarifié

Marquage : immunocytochimie, bleu : noyau DAPI,
vert : Ki67 AF488, rouge : actine AF555

Image d’application de cellules Ptk2

Image d’application d’un cerveau de rat en coupe transversale

Image d’application d’un rein de souris

Cellules Ptk2

Marquage : DAPI, rouge Mitotracker, Acti-Stain 488

Coupe transversale
d’un cerveau de rat

Marquage : Hoechst, RPCA-NF-L-ct et MCA-7D5

Rein de souris

WGA Alexa Fluor 488, phalloïdine Alexa Fluor 568, DAPI

Imagerie en fond clair

Image d’application d’un embryon de souris E15.5 coloré avec du bleu alcian et du rouge rapide nucléaire

Image d’application d’une coupe de côlon colorée à l’HE

Image d’application de cellules sanguines de Xenopus

Embryon de souris E15.5 coloré au bleu alcian et au rouge rapide nucléaire

Données d’image reproduites avec l’aimable autorisation de 1.2.Naoki Takeshita, MD, 1.Professeur Kenta Yashiro, MD, Ph.D., 1.Division of Developmental Biology and Anatomy, Department of Anatomy et 2.Department of Pediatrics, Graduate School of Medical Science, Kyoto Prefectural University of Medicine.

Coupe de côlon

Coloration : HE

Données d’image reproduites avec l’aimable autorisation de Kazuhiko Matsuo, Ph.D, Professeur Kenta Yashiro, MD, Ph.D., Division of Developmental Biology and Anatomy, Department of Anatomy, Kyoto Prefectural University of Medicine.

Cellules sanguines de Xenopus

Coloration : HE

Image d’application d’une cellule souche de maïs

Profil d’expression de Cyp26b1 dans un embryon de souris E9.5 par hybridation in situ sur un montage d’embryon entier.

Image d’application d’embryons matures de capsella

Cellule souche de maïs

Coloration : bleu de méthyle safranine

Profil d’expression de Cyp26b1 dans un embryon de souris E9.5 par hybridation in situ sur un montage d’embryon entier

Données d’image reproduites avec l’aimable autorisation de 1.2.Naoki Takeshita, MD, 1.Professeur Kenta Yashiro, MD, Ph.D., 1.Division of Developmental Biology and Anatomy, Department of Anatomy et 2.Department of Pediatrics, Graduate School of Medical Science, Kyoto Prefectural University of Medicine.

Embryons matures de capsella

Coloration : trichrome

Contraste de gradient : voyez votre échantillon sous un nouveau jour

Contraste de gradient : voyez votre échantillon sous un nouveau jour

  • Fonctionne avec n’importe quel objectif Olympus
  • Moins affecté par les ménisques, les couvercles de récipient et de gouttelettes d’eau
  • Peut être utilisé avec des boîtes de Petri à fond en verre et en plastique et des plaques multipuits
  • Prenez des images à travers les couvercles en plastique des boîtes de Petri et des plaques multipuits et réduisez ainsi les risques de contamination.

Expression de la protéine mCherry transloquée dans la membrane de cellules HEK293T. Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation de Rie Saba, Ph.D., Division of Developmental Biology and Anatomy, Department of Anatomy, Kyoto Prefectural University of Medicine.

Images prises en contraste de gradient

Échantillons de contraste de gradient

Cerveau de rat

Échantillon observé en contraste de gradient : Cellules HEK-293

Cellules HEK-293

Échantillon observé en contraste de gradient : Fibroblastes fixés

Fibroblastes fixés

Échantillon observé en contraste de gradient : rein de souris

Rein de souris

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