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Vue d’ensemble

	Très grande résolution confocale pour tous les échantillons de cellules vivantes Conçu pour une imagerie rapide à très grande résolution en 3D et une viabilité prolongée des cellules lors d’expériences à prises d’images intermittentes, le système de microscope IXplore SpinSR offre une résolution XY à 120 nm sans nécessité de recourir à des procédures de marquage spécifiques. Contactez-nous

Très grande résolution confocale pour tous les échantillons de cellules vivantes

Conçu pour une imagerie rapide à très grande résolution en 3D et une viabilité prolongée des cellules lors d’expériences à prises d’images intermittentes, le système de microscope IXplore SpinSR offre une résolution XY à 120 nm sans nécessité de recourir à des procédures de marquage spécifiques.

Contactez-nous

Gauche : Confocal / Droite : À très grande résolution	Très grande résolution globale Obtenez des images confocales d’une résolution XY allant jusqu’à 120 nm à l’aide de la technique confocale et du système Olympus Super Résolution (OSR). * Image : Microfilaments dans une cellule HeLa : coloration par anticorps anti-actine phalloïdine-Alexa488 (vert), anti-chaîne lourde de la myosine Alexa 568 (rouge). Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Keiju Kamijo,Ph.D. Division of Anatomy and Cell Biology, Faculty of Medicine, TOHOKU Medical and Pharmaceutical University

Gauche : Confocal / Droite : À très grande résolution

Très grande résolution globale

Obtenez des images confocales d’une résolution XY allant jusqu’à 120 nm à l’aide de la technique confocale et du système Olympus Super Résolution (OSR).

* Image : Microfilaments dans une cellule HeLa : coloration par anticorps anti-actine phalloïdine-Alexa488 (vert), anti-chaîne lourde de la myosine Alexa 568 (rouge).
Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Keiju Kamijo,Ph.D. Division of Anatomy and Cell Biology, Faculty of Medicine, TOHOKU Medical and Pharmaceutical University

Adapté aux échantillons vivants

Les algorithmes de l’OSR fonctionnent en temps réel pour éliminer les retards causés par le moyennage des trames ou la reconstruction de l’image, en fournissant des images instantanées à très grande résolution pour vous permettre d’obtenir les résultats plus rapidement.

Cela permet de concevoir des expériences en très grande résolution avec des cellules vivantes, qui sont encore davantage améliorées par les vitesses d’imagerie ultra-rapides et les capacités d’acquisition multicanal du disque rotatif confocal.

Protéines EB3 se fixant à l’extrémité des microtubules qui s’étendent dans les cellules HeLa vivantes. Les protéines EB3 ont été marquées à la GFP par transgénèse.^*1

_{Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Kaoru Kato, PhD, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology Biomedical Research Institute}

Large champ Confocal Très grande résolution	Optimisez vos recherches Le système de microscope IXplore SpinSR peut être facilement intégré à vos équipements existants et à vos protocoles d’échantillons. Il est possible de passer d’une option à l’autre (champ large, confocal et très grande résolution) en un seul clic pour un même échantillon – le microscope s’occupe du reste. Il est possible d’améliorer encore davantage les données des images au moyen des outils d’analyse des images du logiciel cellSens. Les flux de travaiaux efficaces du logiciel vous permettent de gérer efficacement vos données et d’effectuer des analyses sophistiquées qui vous ouvriront de nouvelles portes. Les algorithmes de déconvolution TruSight sont conçus pour fonctionner harmonieusement avec les algorithmes de l’OSR, ce qui permet d’éviter tout surtraitement. Ensemble, ils fournissent des images plus claires et plus nettes que toute autre technique individuelle.

Large champ

Confocal

Très grande résolution

Optimisez vos recherches

Le système de microscope IXplore SpinSR peut être facilement intégré à vos équipements existants et à vos protocoles d’échantillons. Il est possible de passer d’une option à l’autre (champ large, confocal et très grande résolution) en un seul clic pour un même échantillon – le microscope s’occupe du reste.

Il est possible d’améliorer encore davantage les données des images au moyen des outils d’analyse des images du logiciel cellSens. Les flux de travaiaux efficaces du logiciel vous permettent de gérer efficacement vos données et d’effectuer des analyses sophistiquées qui vous ouvriront de nouvelles portes.

Les algorithmes de déconvolution TruSight sont conçus pour fonctionner harmonieusement avec les algorithmes de l’OSR, ce qui permet d’éviter tout surtraitement. Ensemble, ils fournissent des images plus claires et plus nettes que toute autre technique individuelle.

Découvrez des détails en très grande résolution dans les échantillons Pour observer les structures intracellulaires, il est nécessaire d’éviter toute fluorescence hors foyer pouvant flouter les véritables données dans l’image finale. Le système de microscope IXplore SpinSR intègre un système optique confocal qui permet d’utiliser plusieurs objectifs, par exemple les optiques à huile de silicone, ce qui permet ainsi l’acquisition d’images de très grande résolution nettes avec moins de flous, même dans les échantillons épais. Par conséquent, aucun tampon ou fluorophore spécial n’est requis. Il n’est donc pas nécessaire de changer les échantillons ou les protocoles de préparation lors du passage en très grande résolution.	Related Videos Images à prises intermittentes d’un neurone primaire de souris marqué au EGFP après une co-culture avec astrocyte pendant 2 semaines. Il est aisé de constater la différence entre l’épine immature (flèche jaune) et l’épine mature (flèche bleue) et de détecter le changement morphologique au fil du temps. La 3D a été acquise avec un temps d’exposition de 500 ms/image, et un pas de 0,15 µm selon l’axe des Z avec 41 coupes. Les images ont été acquises toutes les 2 minutes pendant 1 heure. 3D affichée par FV31S-DT. _{Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Yuji Ikegaya, PhD Laboratory of Chemical Pharmacology, Graduate School of Pharmaceutical Sciences, The University of Tokyo}

Découvrez des détails en très grande résolution dans les échantillons

Pour observer les structures intracellulaires, il est nécessaire d’éviter toute fluorescence hors foyer pouvant flouter les véritables données dans l’image finale. Le système de microscope IXplore SpinSR intègre un système optique confocal qui permet d’utiliser plusieurs objectifs, par exemple les optiques à huile de silicone, ce qui permet ainsi l’acquisition d’images de très grande résolution nettes avec moins de flous, même dans les échantillons épais. Par conséquent, aucun tampon ou fluorophore spécial n’est requis. Il n’est donc pas nécessaire de changer les échantillons ou les protocoles de préparation lors du passage en très grande résolution.

Images à prises intermittentes d’un neurone primaire de souris marqué au EGFP après une co-culture avec astrocyte pendant 2 semaines. Il est aisé de constater la différence entre l’épine immature (flèche jaune) et l’épine mature (flèche bleue) et de détecter le changement morphologique au fil du temps. La 3D a été acquise avec un temps d’exposition de 500 ms/image, et un pas de 0,15 µm selon l’axe des Z avec 41 coupes. Les images ont été acquises toutes les 2 minutes pendant 1 heure. 3D affichée par FV31S-DT.

_{Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Yuji Ikegaya, PhD

Laboratory of Chemical Pharmacology, Graduate School of Pharmaceutical Sciences, The University of Tokyo}

Confocal Très grande résolution Très grande résolution avec TruSight	Données précises Notre déconvolution TruSight peut être associée à la très grande résolution pour offrir des images plus claires et plus nettes qu’avec la déconvolution seule. La déconvolution itérative restreinte en 3D supprime le flou le long de l’axe des Z pour obtenir une image 3D plus nette. Traitement à haute vitesse de l’image avec la déconvolution TruSight avancée La déconvolution TruSight est compatible avec le système Olympus Super Resolution * Image : tissu de rein de souris coloré avec Alexa488

Confocal

Très grande résolution

Très grande résolution avec TruSight

Données précises

Notre déconvolution TruSight peut être associée à la très grande résolution pour offrir des images plus claires et plus nettes qu’avec la déconvolution seule. La déconvolution itérative restreinte en 3D supprime le flou le long de l’axe des Z pour obtenir une image 3D plus nette.

Traitement à haute vitesse de l’image avec la déconvolution TruSight avancée
La déconvolution TruSight est compatible avec le système Olympus Super Resolution

* Image : tissu de rein de souris coloré avec Alexa488

Imagerie bicolore simultanée

Le système IXplore SpinSR peut utiliser deux caméras simultanément pour obtenir rapidement des images de localisation de deux colorants à très grande résolution. L’utilisation des fluorophores et lignes laser existants le permet.

Fuseau mitotique de cellule en métaphase

Fuseau mitotique de cellule en métaphase*1

_{Des cellules HeLa dérivées du cancer de l’utérus humain ont été fixées et colorées respectivement pour α-tubline (microtubules, rouge) et Hec1 (kinétochores, vert). L’ADN a été coloré avec DAPI (chromosomes, bleu). Les chromosomes interagissent avec les microtubules qui forment le fuseau mitotique via des kinétochores qui s’assemblent sur la région centromérique des chromosomes.

Image reproduite avec l’aimable autorisation de : Masanori Ikeda and Kozo Tanaka, Department of Molecular Oncology, Institute of Development, Aging and Cancer}

Complexe de pores nucléaires d’une cellule Hela

_{Nup153（Alexa 488 : vert), Nup62(Alexa 555 : rouge)

Image reproduite avec l’aimable autorisation de : Hidetaka Kosako, Fujii Memorial Institute of Medical Sciences, Tokushima University}

Références

S. Hayashi et Y. Okada, « Ultrafast superresolution fluorescence imaging with spinning disk confocal microscope optics », Mol. Biol. Cell 26(9), 1743–1751 (2015).

S. Hayashi, « Resolution doubling using confocal microscopy via analogy with structured illumination microscopy », Jpn. J. Appl. Phys. 55(8), 082501 (2016).

A. Nagasawa-Masuda et K. Terai, « Yap/Taz transcriptional activity is essential for vascular regression via Ctgf expression and actin polymerization », PLoS ONE 12(4), e0174633 (2017).

H. Nakajima, et al., « Flow-Dependent Endothelial YAP Regulation Contributes to Vessel Maintenance », Dev. Cell 40(6), 523-536.e6 (2017).

K. Tateishi, et al., « Three-dimensional Organization of Layered Apical Cytoskeletal Networks Associated with Mouse Airway Tissue Development », Sci. Rep. 7, 43783 (2017).

E. Herawati, et al., « Multiciliated cell basal bodies align in stereotypical patterns coordinated by the apical cytoskeleton », J. Cell Biol. 214(5) 571-586 (2016).

M.-T. Ke, et al., « Super-Resolution Mapping of Neuronal Circuitry With an Index-Optimized Clearing Agent », Cell Rep. 14(11) 2718–2732 (2016).

*1 Bien que la lignée cellulaire HeLa soit devenue l’une des plus importantes dans la recherche médicale, nous devons absolument reconnaître que la contribution de Henrietta Lacks à la science s’est produite sans son consentement. Cette injustice, bien qu’elle ait mené à des découvertes clés en immunologie, en maladies infectieuses et en cancer, a également suscité d’importantes conversations sur la confidentialité, l’éthique et le consentement en médecine.
Pour en savoir plus sur la vie de Henrietta Lacks et sur sa contribution à la médecine moderne, cliquez ici.
http://henriettalacksfoundation.org/

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Technologies appliquées

Principe de l’OSR

La technologie Olympus Super Resolution (OSR) permet d’obtenir une résolution latérale (XY) de 120 nm. Elle a été conçue exclusivement pour tirer profit des données spatiales à haute fréquence dans les images confocales. Après le traitement, les images finales sont non seulement plus nettes grâce à une réduction de la taille de point, mais également mieux résolues pour les structures très proches les unes des autres.

Principe de l’OSR

Cellule épithéliale mitotique en culture Chromosome : bleu, tubuline : vert, ZO1 : rouge	Imagerie rapide à très grande résolution et grand champ d’observation Au lieu de balayer minutieusement l’ensemble du champ d’observation, le capteur d’imagerie sensible présent sur le SpinSR10 capture des clichés de l’ensemble de la zone de l’échantillon en une étape pour offrir une imagerie rapide, ce qui permet aux chercheurs d’observer des phénomènes biologiques très rapides. En mode champ large et confocal, le système optique du microscope a un indice de champ de 18, ce qui lui permet de saisir des images avec un champ d’observation plus grand, tandis que deux caméras permettent aux utilisateurs d’acquérir simultanément des images bicolores en très grande résolution. Fondée sur un système optique confocal, la technologie Olympus Super Resolution permet le sectionnement optique et donc l’acquisition d’images claires à très grande résolution avec une réduction du bruit de fond. _{Données d’images d’application fournies avec l’aimable autorisation de : Hatsuho Kanoh, Tomoki Yano, Sachiko Tsukita Graduate School of Frontier Biosciences et Graduate School of Medicine, Osaka University}

Imagerie rapide à très grande résolution et grand champ d’observation

Cellule épithéliale mitotique en culture

Chromosome : bleu, tubuline : vert, ZO1 : rouge

Imagerie rapide à très grande résolution et grand champ d’observation

Au lieu de balayer minutieusement l’ensemble du champ d’observation, le capteur d’imagerie sensible présent sur le SpinSR10 capture des clichés de l’ensemble de la zone de l’échantillon en une étape pour offrir une imagerie rapide, ce qui permet aux chercheurs d’observer des phénomènes biologiques très rapides. En mode champ large et confocal, le système optique du microscope a un indice de champ de 18, ce qui lui permet de saisir des images avec un champ d’observation plus grand, tandis que deux caméras permettent aux utilisateurs d’acquérir simultanément des images bicolores en très grande résolution.

Fondée sur un système optique confocal, la technologie Olympus Super Resolution permet le sectionnement optique et donc l’acquisition d’images claires à très grande résolution avec une réduction du bruit de fond.

_{Données d’images d’application fournies avec l’aimable autorisation de : Hatsuho Kanoh, Tomoki Yano, Sachiko Tsukita

Graduate School of Frontier Biosciences et Graduate School of Medicine, Osaka University}

Disque rotatif offrant une imagerie lumineuse des cellules vivantes

Le modèle à haute sensibilité équipé du disque SoRa réalise une acquisition plus claire des images à très grande résolution grâce au disque rotatif avec microlentille situé dans le sténopé confocal. Chaque sténopé confocal permet la création d’images au moyen d’une puissance laser inférieure, réduisant ainsi le photoblanchiment et la phototoxicité dans votre échantillon tout en offrant des images lumineuses à très grande résolution.

Comparaison de la luminosité

Gauche : Modèle standard / Droite : Modèle à haute sensibilité

Principe du système CSU-W1 avec disque SoRa

Configuration du système CSU-W1 avec disque SoRa

Dans les microscopes confocaux classiques, la formation de l’image est le produit des fonctions d’étalement du point (PSF) d’illumination et de détection. La formation de l’image sur le sténopé à la position D de l’axe optique est le produit de la PSF d’illumination et de la PSF de détection. On peut constater que les informations tirées à partir de la position D/2 de l’axe optique sont transmises, mais pas résolues. Pour corriger ce problème, une microlentille est fixée sur le sténopé et les points focaux individuels projetés sur le sténopé sont réattribués optiquement au centre, ce qui crée une image idéale et augmente la luminosité et la résolution. Ce processus rend la résolution quasiment égale à celle d’un microscope confocal idéal dans lequel le sténopé a été réduit jusqu’à une taille infiniment petite.

_{Référence : T. Azuma et T. Kei, « Super-Resolution Spinning-Disk Confocal Microscopy Using Optical Photon Reassignment », Opt. Express 23, 15003-15011 (2015).}

	Éclairage uniforme dans tout le champ d’observation Le changeur de grossissement est conçu pour le microscope inversé IX83P2ZF et fournit un éclairage uniforme dans tout le champ d’observation. Le système optique télécentrique du changeur optimise la performance des objectifs tout en permettant une commutation motorisée harmonieuse entre le confocal et la très grande résolution.

Éclairage uniforme dans tout le champ d’observation

Le changeur de grossissement est conçu pour le microscope inversé IX83P2ZF et fournit un éclairage uniforme dans tout le champ d’observation. Le système optique télécentrique du changeur optimise la performance des objectifs tout en permettant une commutation motorisée harmonieuse entre le confocal et la très grande résolution.

Résolution Z améliorée Les objectifs à immersion dans l’huile de silicone sont conçus pour les observations profondes dans des tissus. L’aberration sphérique causée par la non-correspondance des indices de réfraction a des répercussions négatives sur la profondeur de l’observation. L’indice de réfraction de l’huile de silicone (n=1,40) est proche de celui des cellules vivantes ou des coupes de tissu en culture (n=1,38), ce qui permet une imagerie de très grande résolution de structures intracellulaires à des dizaines de micromètres de profondeur avec une aberration sphérique minimale.	Related Videos

Résolution Z améliorée

Les objectifs à immersion dans l’huile de silicone sont conçus pour les observations profondes dans des tissus. L’aberration sphérique causée par la non-correspondance des indices de réfraction a des répercussions négatives sur la profondeur de l’observation. L’indice de réfraction de l’huile de silicone (n=1,40) est proche de celui des cellules vivantes ou des coupes de tissu en culture (n=1,38), ce qui permet une imagerie de très grande résolution de structures intracellulaires à des dizaines de micromètres de profondeur avec une aberration sphérique minimale.

	Réduction de l’aberration sphérique L’unité de bague de correction à distance est utilisée pour ajuster la position de la lentille dans l’objectif afin de corriger l’aberration sphérique causée par la non-correspondance des indices de réfraction, ce qui améliore sensiblement le signal, la résolution et le contraste. L’unité IX3-RCC fonctionne avec n’importe quel objectif UIS2 d’Olympus muni d’une bague de correction.

Réduction de l’aberration sphérique

L’unité de bague de correction à distance est utilisée pour ajuster la position de la lentille dans l’objectif afin de corriger l’aberration sphérique causée par la non-correspondance des indices de réfraction, ce qui améliore sensiblement le signal, la résolution et le contraste. L’unité IX3-RCC fonctionne avec n’importe quel objectif UIS2 d’Olympus muni d’une bague de correction.

Réduction de la phototoxicité

Conçu pour les expériences où des cellules vivantes sont observées, le disque rotatif réduit la phototoxicité et le blanchiment. Le contrôleur en temps réel d’Olympus (U-RTCE) permet d’optimiser la vitesse et la précision de l’appareil pendant l’acquisition automatisée, tandis que le système TruFocus maintient la mise au point de chaque image et réduit le stress subi par l’échantillon pendant l’acquisition de données.

En savoir plus sur l’U-RTCE

	Gestion des expériences complexes Le gestionnaire de processus simplifie l’acquisition d’images multicolores, à prises intermittentes ou à empilements selon l’axe Z. Le gestionnaire d’expériences graphique programmable (GEM) permet aux utilisateurs de définir des instructions d’automatisation plus complexes à l’aide d’une interface graphique qui prend en charge un large éventail de protocoles d’imagerie expérimentale et de déclenchement de dispositifs. Générez des protocoles expérimentaux personnalisés pouvant être modifiés facilement à tout moment, dès que nécessaire, au cours du processus d’imagerie.

Gestion des expériences complexes

Le gestionnaire de processus simplifie l’acquisition d’images multicolores, à prises intermittentes ou à empilements selon l’axe Z. Le gestionnaire d’expériences graphique programmable (GEM) permet aux utilisateurs de définir des instructions d’automatisation plus complexes à l’aide d’une interface graphique qui prend en charge un large éventail de protocoles d’imagerie expérimentale et de déclenchement de dispositifs. Générez des protocoles expérimentaux personnalisés pouvant être modifiés facilement à tout moment, dès que nécessaire, au cours du processus d’imagerie.

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Caractéristiques techniques

Monture de microscope
IX83P2ZF
Méthode d’observation > Très grande résolution ✓
Méthode d’observation > Confocal ✓
Méthode d’observation > Fluorescence (excitation bleue/verte) ✓
Méthode d’observation > Fluorescence (excitation ultraviolette) ✓
Méthode d’observation > Contraste interférentiel différentiel (CID) ✓
Méthode d’observation > Contraste de phase ✓
Méthode d’observation > Fond clair ✓
Tourelle porte-objectifs rotative > Motorisée (6 positions) ✓
Mise au point > Motorisée
✓
Mise au point > Dispositif de compensation de la dérive en Z ✓
Têtes d’observation > Champ large (numéro de champ : 22) > Binoculaire inclinable ✓
Illuminateur > Illuminateur de Köhler à lumière transmise > Lampe à DEL ✓
Illuminateur > Illuminateur de Köhler à lumière transmise > Lampe halogène de 100 W ✓
Illuminateur > Illuminateur pour fluorescence > Lampe à mercure de 100 W ✓
Illuminateur > Illuminateur pour fluorescence > Éclairage avec guide de lumière ✓
Tourelle de miroirs à fluorescence > Motorisée (8 positions) ✓
Platine > Motorisée
Contact your local sales representative to hear about motorized stage options
Platine > Mécanique > Platine mécanique IX3-SVR avec molette à droite
X: 114 mm, Y: 75 mm
Platine > Mécanique > Platine mécanique IX3-SVL avec molette courte à gauche
X: 114 mm, Y: 75 mm
Condenseur > Motorisé > Condenseur universel Distance de travail 27 mm, ouverture numérique 0,55, ouverture motorisée et polariseur
Condenseur > Réglage manuel > Condenseur universel O. N. : 0,55 / Distance de travail : 27 mm
Condenseur > Réglage manuel > Condenseur à ultra-grande distance de travail O. N. : 0,3 / Distance de travail : 73,3 mm
Scanner confocal
CSU-W1
Traitement pour très grande résolution
Filtre Olympus Super Resolution (OSR)
Accessoires
Contrôleur de bague de correction à distance (IX3-RCC)
Contrôleur en temps réel (U-RTCE)
Boîtier d’incubation
Dimensions (L × P × H) 323 (L) × 475 (P) × 706 (H) mm (statif de microscope IX83)
Poids Env. 47 kg (IX83P2ZF)

Monture de microscope		IX83P2ZF
Méthode d’observation > Très grande résolution		✓
Méthode d’observation > Confocal		✓
Méthode d’observation > Fluorescence (excitation bleue/verte)		✓
Méthode d’observation > Fluorescence (excitation ultraviolette)		✓
Méthode d’observation > Contraste interférentiel différentiel (CID)		✓
Méthode d’observation > Contraste de phase		✓
Méthode d’observation > Fond clair		✓
Tourelle porte-objectifs rotative > Motorisée (6 positions)		✓
Mise au point > Motorisée		✓
Mise au point > Dispositif de compensation de la dérive en Z		✓
Têtes d’observation > Champ large (numéro de champ : 22) > Binoculaire inclinable		✓
Illuminateur > Illuminateur de Köhler à lumière transmise > Lampe à DEL		✓
Illuminateur > Illuminateur de Köhler à lumière transmise > Lampe halogène de 100 W		✓
Illuminateur > Illuminateur pour fluorescence > Lampe à mercure de 100 W		✓
Illuminateur > Illuminateur pour fluorescence > Éclairage avec guide de lumière		✓
Tourelle de miroirs à fluorescence > Motorisée (8 positions)		✓
Platine > Motorisée		Contact your local sales representative to hear about motorized stage options
Platine > Mécanique > Platine mécanique IX3-SVR avec molette à droite		X: 114 mm, Y: 75 mm
Platine > Mécanique > Platine mécanique IX3-SVL avec molette courte à gauche		X: 114 mm, Y: 75 mm
Condenseur > Motorisé > Condenseur universel		Distance de travail 27 mm, ouverture numérique 0,55, ouverture motorisée et polariseur
Condenseur > Réglage manuel > Condenseur universel		O. N. : 0,55 / Distance de travail : 27 mm
Condenseur > Réglage manuel > Condenseur à ultra-grande distance de travail		O. N. : 0,3 / Distance de travail : 73,3 mm
Scanner confocal		CSU-W1
Traitement pour très grande résolution		Filtre Olympus Super Resolution (OSR)
Accessoires		Contrôleur de bague de correction à distance (IX3-RCC) Contrôleur en temps réel (U-RTCE) Boîtier d’incubation
Dimensions (L × P × H)		323 (L) × 475 (P) × 706 (H) mm (statif de microscope IX83)
Poids		Env. 47 kg (IX83P2ZF)

Galerie des applications

Stéréocils et kinocils de cellules ciliées internes dans l’organe de Corti (actine : orange, tubuline : vert)

_{Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Hatsuho Kanoh¹, Toru Kamitani^1,2, Hirofumi Sakaguchi², Sachiko Tsukita¹
¹Graduate School of Frontier Biosciences et Graduate School of Medicine, université d’Osaka
²Department of Otolaryngology-Head and Neck Surgery, Kyoto Prefectural University of Medicine}

Stéréocils et kinocils de cellules ciliées internes dans l’organe de Corti (actine : orange, tubuline : vert)

En savoir plus sur : Related Videos	Cellule épithéliale mitotique en culture. (Chromosome : bleu, tubuline : vert, ZO1 : rouge) _{Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Hatsuho Kanoh, Tomoki Yano, Sachiko Tsukita Graduate School of Frontier Biosciences et Graduate School of Medicine, université d’Osaka}

En savoir plus sur :
Related Videos

Cellule épithéliale mitotique en culture. (Chromosome : bleu, tubuline : vert, ZO1 : rouge)

_{Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Hatsuho Kanoh, Tomoki Yano, Sachiko Tsukita

Graduate School of Frontier Biosciences et Graduate School of Medicine, université d’Osaka}

Mitochondrie étiquetée par GFP. Images acquises à 30 ips; permet d’observer les mouvements individuels de la mitochondrie. _{Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Kumiko Hayashi, Ph.D., Graduate School of Engineering, Tohoku University}

Mitochondrie étiquetée par GFP. Images acquises à 30 ips; permet d’observer les mouvements individuels de la mitochondrie.

_{Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Kumiko Hayashi, Ph.D., Graduate School of Engineering, Tohoku University}

Mitochondrie étiquetée par GFP. Images acquises à 30 ips; permet d’observer les mouvements individuels de la mitochondrie.

	Cellules de Purkinje marquées avec GFP. Image XYZ avec image confocale et très grande résolution dans différentes positions de l’axe Z. Les images à très grande résolution sont projetées sur l’axe Z (10 coupes). 3D affichée par FV31S-DT. _{Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Yukari Takeo, Michisuke Yuzaki, PhD., Department of Physiology, School of Medicine, Keio University}

Cellules de Purkinje marquées avec GFP. Image XYZ avec image confocale et très grande résolution dans différentes positions de l’axe Z. Les images à très grande résolution sont projetées sur l’axe Z (10 coupes). 3D affichée par FV31S-DT.

_{Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Yukari Takeo, Michisuke Yuzaki, PhD., Department of Physiology, School of Medicine, Keio University}