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利用更短的在实验室时间获得更长活细胞成像的4个技巧

作者  -
活细胞成像

为了遵守社交间隔要求以及确保员工安全,研究机构会限制在实验室内工作的时间,因此实现活细胞成像自动化以及简化任务比以往任何时候都更为重要。

但是,为了优化设备并避免发生可能需要重新进入实验室的意外,很多注意事项均须加以考虑。

这里为您介绍4个需要留意的技巧:

1.让标本在温暖、稳定的环境中保持健康状态。

活细胞成像过程中最大挑战之一就是如何在温暖舒适的培养箱之外确保样品健康并能够在显微镜下表现正常。

尽管存在难度,但您可以利用能够为细胞提供稳定温度、湿度和CO 2密度的显微镜专用载物台上式培养箱或封闭式培养箱确保您的标本环境尽可能适宜。

另外记得加热您的物镜,否则其作为寒冷的接触源可能会损害样品的健康。

再者也要记住,微孔板外围区域可能存在比中心区域更高的环境波动风险,因此务必使用中心区域的孔,并避免使用边缘附近的孔影响稳定性。比如说,如果您使用的是96孔板(12×8孔),那么就只使用中心的60孔(10×6孔)进行实验。

活细胞载物台上式培养箱系统

图1.载物台上式培养箱。

2.通过创造稳定的环境温度改善聚焦效果。

另一个需要考虑的因素是室内温度,这是因为细微的变化也会影响到成像性能。

显微镜的环境温度稳定性对于活细胞的高倍率观察尤其重要。由于高数值孔径观察的景深较浅,因此即使温度变化造成很小的Z漂移,您的系统也可能会因此离焦。

为了优化环境条件,开始实验之前请确保打开您的空调并保持室温稳定。另外为了提高稳定性,还要避免气流从空调直接吹向显微镜。

3.通过精确设置焦点和校正环提高图像质量。

解决诸如Z漂移之类时间性波动的另一种方法是开始活细胞实验前尽可能精确设置焦点和环校正。

研究人员往往只会细心调整焦点,而忽略了校正环。然而,校正环能够显著改善图像的质量,在进行深层组织观察或使用高数值孔径物镜时尤其如此。

校正环的理想位置取决于诸如样品折射率、观察平面深度和盖玻片厚度等许多因素。即便大多数盖玻片和玻璃底培养皿的厚度只有170 μm(#1.5),其仍然会导致波动,并且更重要的是,我们不能以塑料培养皿推测这些值。

因此,务必通过检查图像对比度的方式对校正环进行精确调整,尤其是在使用塑料微孔板或培养皿时更要如此。

通常情况下,环校正必须要在现场进行调整。对于诸如使用多光子显微镜进行深层观察等需要主动调整环校正的实验,这可能意味着需要在实验室中花费更多的时间。幸运的是,您可以选择使用电动校正环自动执行这些调整。

适用于球差校正的显微镜物镜

图2.物镜上的校正环带有可指示盖玻片厚度的指示器。

若要了解有关深层成像所用电动物镜系统的更多信息,请务必阅读我们的博客文章:如何改善多光子显微观察的深层成像效果。

4.使用专用聚焦模块让样品保持聚焦。

可是如果发生Z漂移怎么办?

即使完成上述所有操作,您的图像也可能无法始终保持对焦。毕竟,很多因素都会造成Z漂移。其既可能因诸如添加试剂等主动和有益改变所致,也可能由于有人在室内行走或环境温度变化造成的物理振动引起。

尽管大多数电动显微镜均具备基于图像对比度的自动对焦功能,但仍然有其局限性:

  • 调整范围有限
  • 基于对比度聚焦的激发光会造成光毒性

确保在活细胞实验过程保持对焦的一种方法是使用专用聚焦模块,比如我们的TruFocus基于近红外(NIR)激光的Z漂移补偿器。近红外光还可在长时间观察过程中尽可能地降低光毒性以及成像波长的串扰。

该模块的单次自动对焦(AF)模式可预防不必要的照明,而连续自动对焦模式可用于实时观察或快速现象的连续图像采集。

用于活细胞成像的Z漂移补偿器

图3.使用奥林巴斯 TruFocus Z漂移补偿器让样品清晰聚焦。

通过观看下面的短视频,您就可以了解Z漂移补偿是如何用于长时间成像的:

通过进行高效的活细胞实验保持高效多产

工作始终无法逃避,所以我们希望这些技巧可以帮助您保持高效多产,实现更长时间的活细胞成像,让您的科研工作更上一层楼。如果您对如何实现实验室自动化有任何疑问,敬请随时联系我们

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高级产品与策略规划师兼产品经理

Takeo Ogama是Evident高级产品与策略规划师,也是显微镜相机产品经理。他拥有8年的各种产品研发部门(包括相机部门)的工作经验,以及8年的产品规划、营销和管理经验。他拥有日本大阪大学中微子物理学硕士学位。

2020年9月15日
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