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Übersicht
Mehr Details in der Tiefe sehen
Das FVMPE-RS Multiphotonenmikroskop wurde für Aufnahmen tief in biologischen Präparaten entwickelt und liefert Aufschluss darüber, wie Zellen in lebendem Gewebe funktionieren und interagieren.
Hochempfindliches, hochauflösendes Deep Imaging mit Multiphotonen-Technologie
Das FVMPE-RS Multiphotonenmikroskop verfügt über fortschrittliche Technologie und ein hochmodernes Optik-Design, um die Empfindlichkeit und Auflösung bei Aufnahmen tief im Gewebe zu verbessern.
- Ein großes spektrales Transmissionsfenster von 400 nm bis 1600 nm sorgt für eine effiziente Anregung im nahen Infrarotbereich, ohne die Detektion kurzer Wellenlängen zu beeinträchtigen.
- Der großflächige Detektionsstrahlengang erfasst mehr Emissionssignale, insbesondere Streuungsphotonen mit großem Winkel
- TruResolution Objektive bieten eine automatisierte Kompensation der sphärischen Aberration, um Helligkeit und Auflösung zu erhöhen und feine Details in jeder Ebene innerhalb eines tiefen Bildstapels sichtbar zu machen.
3D-rekonstruiertes Bild eines In-vivo-Maushirns (Thy1-YFP-H-Maus, sensorischer Kortex), aufgenommen mit einem TruResolution-Objektiv mit automatischer Anpassungsfunktion (links) und maximalen Projektionsbildern in einer Tiefe von ca. 600 μm. Bildmaterial ohne (oben rechts) und mit (unten rechts) Verwendung der automatischen Anpassungsfunktion.
Die Bilder wurden im RIKEN BSI-Olympus Collaboration Center aufgenommen und von Dr. Hiromu Monai, Dr.Hajime Hirase und Dr. Atsushi Miyawaki zur Verfügung gestellt.
Above: 438 fps / Below: 30 fps
FVMPE-RS: Zebrafish embryo blood flow
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Blutstrom in einem Zebrafisch-Embryo.
Oben: 438 fps / Unten: 30 fps
Hochgeschwindigkeitsbildgebung für schnelle, dynamische zelluläre Prozesse
Resonanz-Scanning mit hoher Geschwindigkeit und lineare Abtastung mit hoher Auflösung sind Standard.
- Die Vollbild-Bildgebung mit 30 Bildern pro Sekunde (fps) reduziert Bewegungsartefakte beim In-vivo- und Lebendzell-Bildgebung.
- Die maximale Bildgebungsgeschwindigkeit von 438 ermöglicht die Aufnahme schneller, dynamischer Phänomene, beispielsweise des Zelltransports im Blutstrom und der Kalziumsignalisierungsereignisse in Neuronen und anderen Zellen.
Breitere spektrale Abdeckung durch Multiwellenlängen-Anregung
Die FVMPE-RS Bildgebungsplattform unterstützt einen gepulsten Infrarotlaser mit zwei Wellenlängen oder zwei unabhängige abgleichbare Infrarotlaser für die Multichannel-Bildgebung mit Multiphotonen-Anregung.
- Optimale Anregung verschiedener Fluorophore ohne mehrmaligen Laserabgleich
- Die unabhängige Leistungssteuerung jeder Laserlinie erleichtert die gleichzeitige Erfassung von Fluorophoren mit unterschiedlichen Effizienzen
- Laserwellenlängen über 1000 nm ermöglichen die Nutzung des immer größer werdenden Angebots an rotverschobenen Fluoreszenzfarbstoffen und -proteinen sowie der Bildgebung mit praktischer Frequenzverdreifachung (Third Harmonic Generation, THG).
Bildgebung von Schweinefettgewebe mit Frequenzverdreifachung. Ungefärbtes Schweinefettgewebe wurde mit einem Femtosekundenlaser bei 1250 nm bestrahlt, die Frequenzverdopplung an Kollagenfasern wurde bei 625 nm und die Frequenzverdreifachung an Lipidgrenzflächen bei 416 nm detektiert.
Optionale Funktionen für erweiterte Anwendungen
Das FVMPE-RS Multiphotonenmikroskop ist eine modulare Plattform, mit der das vorhandene System bei steigendem Einsatz in der Forschung problemlos erweitert werden kann.
Verfügbare Optionen:
- Unabhängiger Scannerpfad für die Optogenetik und andere Photomanipulationsexperimente
- Analoge Eingangskanäle zur Unterstützung elektrophysiologischer Experimente
- Digitale TTL-Ein-/Ausgangslinien zur Koordination sensorischer Stimuli mit Multiphotonen-Bildgebung bei Verhaltensexperimenten
Für die Multiphotonen-Betrachtung optimierte intuitive Software
Das anwenderspezifische Software-Layout bietet mehr Flexibilität und steigert so die Effizienz:
- Anpassung der Benutzeroberfläche an die jeweiligen Experimente
- Schnellerer Zugriff auf erweiterte Funktionen durch spezifische Auswahl der tatsächlich benötigten Tools
- Wiederholbare und einheitliche Bildgebung durch Speicherung der Erfassungsparameter aus jedem Experiment
Online-Analyse und Bildverarbeitung, einschließlich spektraler Entmischung und 3D-Rendering, sind Standard.
3 Mikroskopstative zur Auswahl
Aufrechtes Mikroskopsystem — für In-vivo- und In-vitro-Multiphotonen-Mikroskopie
Der große Tischabstand und der lange Fokushub des aufrechten Standardstativs bieten Platz für eine Vielzahl von Proben, von Gewebeschnitten bis hin zu lebenden Mäusen und anderen kleinen Tieren.
Mikroskopsystem mit Schwenkvorrichtung — Für In-vivo-Beobachtungen mit erhöhtem Platzbedarf
Der Abstand von 355 mm zwischen dem Objektiv und der Grundplatte erleichtert In-vivo-Beobachtungen mit großem Platzbedarf, z. B. bei Bildgebung des Verhaltens von Mäusen im Wachzustand.
Weitere Informationen über das Mikroskopsystem mit Schwenkvorrichtung
Invers-Mikroskopsystem — Zur In-vitro-Betrachtung von 3D-Zellen (Sphäroid) und Gewebekulturen
Das inverse Stativ ist eine stabile Plattform für Zeitrafferaufnahmen dicker lebender Proben, insbesondere von Gewebekulturen und 3D-Sphäroid- und Organoidzellkulturen. Diese Konfiguration ist auch nützlich für die intravitale Bildgebung von Organen und Geweben bei einem kleinen Tier durch ein Körperfenster hindurch.
Unterstützung gewünscht?
Angewandte Technologien
Maximierung der Auflösung beim Deep Imaging
Bessere Auflösung und besserer Kontrast beim Deep Imaging dicker Präparate mit TruResolution-Objektiven.
Diese Objektive verfügen über einen automatisierten Korrekturring, der die sphärische Aberration dynamisch kompensiert und gleichzeitig die genaue Fokusposition beibehält. Sie passen sich automatisch an jede Ebene eines Volumenbildes an und liefern schärfere und hellere 3D-Tiefenbilder.
TruResolution: Maximierung der Auflösung beim Deep Imaging
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Anwenderfreundliche, präzise Bildgebung mit automatisierter Laserausrichtung
Eine durch Wellenlängenabgleich, Temperaturschwankungen und andere Ursachen für Hohlraumverschiebungen verursachte Laserdrift kann in typischen Systemen eine Fehlausrichtung des Anregungsstrahls verursachen.
Das FVMPE-RS Multiphotonenmikroskop erhält selbst bei einer Laserdrift eine präzise 4-Achsen-Laserausrichtung des Anregungsstrahls in die Scannereinheit und vereinfacht so die Systemwartung. Strahlposition und Strahlwinkel werden automatisch angepasst, um eine höhere Laserleistung und einheitliche Pixelregistrierung zu erzielen.
Wenn das vorhandene System über zwei Anregungslaserlinien verfügt, wird durch diese Funktion die Ausrichtung zwischen den Strahlen beibehalten, und Fehler bei der Registrierung zwischen den Kanälen werden vermieden.
Hochleistungsfähiges Scannen mit bis zu 438 Bildern pro Sekunde
Der schnelle Resonanz-Scanner und der lineare Galvanometer-Scanner ermöglichen schnelle und hochauflösende Aufnahmen mit ein und demselben System. Vorteile durch die Aufzeichnungsraten von bis zu 438 fps bei 512 × 32 Pixeln oder 30 fps bei 512 × 512 Pixeln über das gesamte Sehfeld (FN 18):
- Vermeidung von Bewegungsartefakten bei der Bildgebung dynamischer Proben
- Verfolgung sich schnell bewegender Zellen im Blutstrom
- Untersuchung der schnellen Dynamik des Membranpotentials von Neuronen und anderen Zellen
Effiziente Lasertransmission
Durch silberbeschichtete Scannerspiegel wird eine höhere Laserleistung auf das Präparat übertragen, sodass hellere Bilder möglich werden.
Die erhöhte Reflexion im nahen Infrarotbereich im Vergleich zu herkömmlichen aluminiumbeschichteten Spiegeln ist besonders vorteilhaft für In-vivo-Untersuchungen in tiefen Schichten.
Maximierung der Leistung der Fluoreszenzbildgebung durch Detektoroptionen
Mit hochempfindlichen Galliumarsenidphosphid (GaAsP) Photomultiplier-Röhrendetektoren (PMT) können Bilder mit hohem Signal-Rausch-Verhältnis (SNR) auch bei schwacher Fluoreszenz aufgenommen werden. Sie bieten eine höhere Quantenausbeute als Standard-Multialkali- (MA-) PMTs und verfügen zur weiteren Verbesserung des SNR über eine lüfterlose Kühlung.
Bei hell emittierenden Proben lässt sich das hohe SNR des GaAsP-Detektors mit dem größerem Dynamikbereich des MA-Detektors kombinieren.
Um eine höhere Lichtausbeute zu erreichen, verfügt der Non-Descanned Detektionsstrahlengang des Systems über eine großflächige Optik zur besseren Erfassung gestreuter Fluoreszenzphotonen, sodass die breite Erfassungskapazität unserer Multiphotonenobjektive voll ausgeschöpft werden kann.
MPE-Objektive für Deep Imaging
Zur Betrachtung von transparentem Gewebe bis zu einer Tiefe von bis zu 8 mm
Dank ihrer großen Sehfelder können die speziellen Multiphotonenobjektive von Olympus gestreute Fluoreszenzphotonen effizient erfassen und hellere Bilder tiefer Schichten von In-vivo- und In-vitro-Proben erzeugen.
- Auswahl eines auf die individuellen Forschungsanforderungen abgestimmten Objektivs aus großem Sortiment
- Verschiedene optische Konstruktionen mit hoher numerischer Apertur, langem Arbeitsabstand, großem Sehfeld und Kompatibilität mit einer Reihe von Immersionsmedien und Gewebereinigungsmitteln
- Der Korrekturring gleicht den Brechungsindex, die Dicke des Deckglases und die Gewebetiefe aus.
- TruResolution Objektive bieten eine vollautomatische Korrektur der sphärischen Aberration.
Transmission für sichtbares und IR-Licht durch hochmoderne optische Beschichtungen
Unsere Multiphotonenobjektive und Scanner-Optiken verfügen über die optische 1600er Beschichtung von Olympus und damit über eine hervorragende Transmission im Bereich von 400 nm bis 1600 nm.
Eine effiziente Infrarottransmission bedeutet mehr Leistung zur Fluoreszenzanregung in der Tiefe, eine hohe Leistung bei kurzen Wellenlängen eine effiziente Erfassung der Fluoreszenz und der emittierten Oberwellen.
Signalmaximierung im Tieffokusmodus
Im Tieffokusmodus wird der Durchmesser des Laserstrahls an die Laserstreuung angepasst. Bei In-vivo-Proben mit starker Laserstreuung wird der Strahl verengt, sodass mehr Anregungsphotonen tiefer in die Probe gelangen und hellere Bilder erzeugen.
Unabhängige Photostimulationskontrolle
Folgende Zusatzmodule ermöglichen eine präzise Photostimulation im Mikrosekundenbereich und bei Photobleaching-Experimenten:
- Unabhängiger Galvanometer-Scanner (SIM-Scanner)
- Lasermodul für sichtbares Licht
Es können beliebige Stimulationsregionen unabhängig von einer definierten Region (ROI) für die Bildgebung definiert werden. Wenn eine höhere Geschwindigkeit erforderlich ist, kann auch eine sequenzielle Random-Access-Mehrpunktstimulation durchgeführt werden.
Bei Systemen mit zwei IR-Bildgebungslinien ermöglicht der SIM-Scanner eine Multiphotonenstimulation gleichzeitig mit der Bildgebung.
Mikrosekunden-Timing für die Elektrophysiologie und Optogenetik
Ein Hardware-Sequenzer ermöglicht ein präzises Timing im Mikrosekundenbereich für Stimulations- und Triggering-Ereignisse.
Die Stimulation kann räumlich und zeitlich mit dem Bildgebungscan synchronisiert werden, was die Aufnahme einer schnellen Reaktionsdynamik mit präziser Lokalisierung erleichtert. Für die Elektrophysiologie und Optogenetik könnte dies den Unterschied zwischen der Erkennung einer synchronen und einer asynchronen Stimulusreaktion bedeuten.
Bei Aufnahmen mit einer Dauer von mindestens zwei Wochen oder Experimenten mit komplexen Verfahren, bei denen zwischen Bildgebungsarten gewechselt werden muss, behält das Sequenzmanager-Softwaremodul die Präzision im Millisekundenbereich bei und liefert auch bei anspruchsvollen In-vivo- und In-vitro-Experimenten hochwertige Daten.
Weitere Informationen über multidimensionale Bildgebung und Multi-Area Time-Lapse-Bildgebung
Unterstützung gewünscht?
Lösungen
Synchronisation elektrophysiologischer Daten und Laserlichtstimulation mit der Analogeinheit
Zur Unterstützung elektrophysiologischer Experimente stehen analoge Eingänge und digitale TTL-E/A zur Verfügung. Die Analogeingangseinheit zeichnet externe Spannungssignale als Bilddaten auf. Mit dem Patch-Clamp-Verfahren gemessene, lichtstimulierte elektrische Signale können mit der Bildaufnahme synchronisiert und als Pseudofarbenintensitäts-Overlay dargestellt werden.
Weitere Informationen über die Analogeinheit
Die Multipoint Mapping Advanced Software (MMASW) ermöglicht eine präzise Lichtstimulation mehrerer willkürlich ausgewählter Punkte oder von Punkten in einer rechteckigen definierten Region (ROI) bei Mapping-Scans. Sie kann gleichzeitig elektrische Spannungssignale vom Patch-Clamping-System aufzeichnen.
- Mehrpunkt-Scan: Festlegung der Anzahl der Punkte auf einem Bild für die Lichtstimulation. Für jeden unabhängigen Stimulationspunkt können verschiedene Laserlinien ausgewählt werden.
- Mapping-Scan: Die Software verhindert, dass benachbarte Punkte angeregt werden, und ermöglicht so eine genauere Beobachtung der Reaktion des Ziels.
- Zeitpunkt, Dauer und Intervall der Stimulation lassen sich bis auf die Mikrosekunde genau definieren, und das Experiment kann mit kontinuierlicher oder gepulster Stimulation programmiert werden.
Weitere Informationen über das Softwaremodul für Mehrpunkt- und Mapping-Scans
*Mehrfarbige Punkt-für-Punkt-Lasersteuerung mit einem SIM-Scanner mit mehreren Lasern für gemischte ChR2- und NpHR-Versuche.
Erstellung von 3D-Karten von Stimulationsreaktionen
Spezielle Mapping-Scans verwenden eine Pseudozufallssequenz zur Erstellung präziserer räumlicher Reaktionsprofile bei der Messung der elektrophysiologischen Reaktion auf optische Stimulation. Auf einem hochauflösenden Bild können direkte elektrische Patch-Clamp-Messwerte und Fluoreszenzsignale von Kalzium- oder Spannungsindikatoren überlappend dargestellt werden. Intensitätsschwellenwerte ermöglichen die Definition eines Hochgeschwindigkeits-Mehrpunkt-Scans der aktivsten Regionen, Dieser kann mit einem optionalen Piezo-Z-Laufwerk auf 3D-Reaktionskarten erweitert werden.
Ein großes Sehfeld in Kombination mit hoher Auflösung
Mit der MATL-Funktion (Multiarea Time Lapse) lässt sich die gesamte Probe in hoher Auflösung und in einem breiteren Kontext anzeigen:
- Automatisches Erfassen und Stitching mehrerer benachbarter Bilder über ein sehr großes Sehfeld mithilfe eines motorisierten Tisches
- Programmierung einer Zeitrafferaufnahme über das gesamte zusammengesetzte Feld oder sogar über nicht nebeneinander liegende Bereiche
- Einfache Lokalisierung der Position spezifischer Zellen in dem größeren Bild mit der Mappingfunktion.
Bilddaten mit freundlicher Genehmigung von Urs Ziegler und Jose Maria Mateos, Center for Microscospy and Image Analysis, Universität Zürich. Die Mauslinie L15 wurde von Pico Caroni, FMI, Basel, zur Verfügung gestellt.
Unterstützung gewünscht?
Software
Präzise Steuerung von Experimenten
Mit dem Sequenzmanager wird die Koordination von Experimenten zum Kinderspiel. Mithilfe der folgenden Funktionen können komplexe Protokolle mit genauem Timing einfach organisiert und direkt ausgeführt werden:
- Änderung der Bildfrequenz während Zeitrafferaufnahmen
- Automatisches Umschalten zwischen verschiedenen Anregungswellenlängen
- Wiederholung von Photostimulationsereignissen an verschiedenen Positionen während der Bildaufnahme
Zur einheitlichen Ausführung von Experimenten können Protokolle gespeichert und wieder geladen werden.
Trennung überlappender Kanäle durch spektrale Dekonvolution
Stark überlappende Fluoreszenzspektren können biologische Untersuchungen mit mehreren Markern erschweren. Jetzt können überlappende Spektralkanäle durch spektrale Dekonvolution mit einem Algorithmus zum blinden Entmischen oder durch zuvor gespeicherter Mehrkanalprofile getrennt werden. Das „Übersprechen“ zwischen den Kanälen kann bereits während der Bildaufnahme durch Live-Verarbeitung beseitigt werden.
Normaler Modus
Die spektrale Überlappung roter und grüner Fluoreszenz verursacht bei der normalen Erfassung eine gegenseitige Störung der Kanäle.
Live-Entmischungsmodus
Im Live-Entmischungsmodus erfolgt bei der Bildaufzeichnung zur besseren Trennung distinkter Fluorophore eine spektrale Dekonvolution.
3D-Rendering
Umfangreiche Z-Stapel-Daten können zu einer 3D-Darstellung gerendert werden. Für animierte Darstellungen von 3D-Bildern mit Vergrößerung und verschiedenen Kamerawinkeln können wichtige Ansichten als Keyframes gespeichert werden.
4 mm 3D-Stapel auf mit Texas Red eingefärbtem Blutgefäß im Maushirn.
Bilddaten mit freundlicher Genehmigung von Hiroshi Hama, Rie Ito, Atsushi Miyawaki, Laboratory for Cell Function Dynamics, RIKEN Brain Science Institute
(Links) Rohdaten mit 30 fps, die bei geringer Laserleistung (0,05 %, 488 nm) erfasst wurden.
(Rechts) Verarbeitung unter Verwendung des gleitenden Mittelwerts (10 Einzelbilder) bei Daten mit 30 fps, die mit geringer Laserleistung erfasst wurden.
Verarbeitung unter Verwendung des gleitenden Mittelwerts
High-Speed-Scanning bei geringer Laserleistung zur Vermeidung von Phototoxizität kann das Signal-Rausch-Verhältnis reduzieren. Die Verarbeitung unter Verwendung des gleitenden Mittelwerts sorgt für die erforderliche Flexibilität zur Anpassung von Hochgeschwindigkeits-Zeitrafferaufnahmen unter Beibehaltung der Zeitskala und der Originaldaten.
Makro- und Mikro-Beobachtung
Die Verwendung eines Objektivs mit hoher numerischer Apertur (NA), eines motorisierten Tisches und der Olympus-Software ermöglichen Mosaik-Aufnahmen:
- Erfassung kontinuierlicher 3D (XYZ) und 4D (XYZT) Aufnahmen benachbarter Sehfelder
- Automatisierung des gesamten Prozesses von der Bildaufzeichnung bis zum Stitching
- Schnelle Erstellung von zusammengesetzten Bildern mit der Stitching-Funktion
- Vergrößerung einzelner Abschnitte der aus Kacheln bestehenden Bilder ohne Auflösungsverluste
Tiefenhelligkeitskorrektur
Bei der Betrachtung dicker Proben können Bilder dunkler werden, wenn der Brennpunkt tiefer liegt. Mit der Bright Z Tiefenhelligkeitskorrektur werden Detektorempfindlichkeit und Laserleistung kontinuierlich angepasst, so dass eine gleichmäßige Helligkeit gewährleistet ist. Diese Funktion ergänzt die dynamischen TruResolution-Objektive, die ebenfalls eine automatische Korrektur der sphärischen Aberration je nach Tiefe durchführen.
Erweiterte Analysefunktionen
Die Software der FVMPE-RS Bildgebungsplattform ist in die Olympus cellSens Bildanalyse-Software integriert und erweitert die Analysefunktionen des Systems.
Optionale Funktionen:
- 3D-Dekonvolution von Z-Stapel-Bildern
- Flächenschätzung für jeden Partikel in einem Bild
- Bildverarbeitungsfilter
- Kolokalisierungsanalyse
Unterstützung gewünscht?
Spezifikationen
FLUOVIEW FVMPE-RS
| Einzel-Lasersystem | System mit zwei Laserlinien | Doppellasersystem | ||
|---|---|---|---|---|
| Einheit | Qualifizierte gepulste IR-Laser mit „Negative Chirp“ zur Multiphotonenanregung | Produkte von Spectra-Physics: MAITAI HPDS-OL: 690 nm–1040 nm MAITAI eHPDS-OL: 690 nm–1040 nm INSIGHT X3-OL: 690 nm–1300 nm INSIGHT X3 DUAL/DUALC-OL: 680 nm–1300 nm + 1045 nm Kohärente Produkte: Chameleon Vision I Olympus: 680 nm–1080 nm Chameleon Vision II Olympus: 680 nm–1080 nm Chameleon Vision I Olympus: 690 nm–1050 nm | ||
| Primärer gepulster IR-Laser |
MAITAI HPDS-OL
MAITAI eHPDS-OL INSIGHT X3-OL Chameleon Vision I Olympus Chameleon Vision II Olympus Chameleon Vision S Olympus |
INSIGHT X3 DUAL-OL
INSIGHT X3 DUALC-OL |
MAITAI HPDS-OL
MAITAI eHPDS-OL INSIGHT X3-OL Chameleon Vision I Olympus Chameleon Vision II Olympus Chameleon Vision S Olympus | |
|
Zusätzliche IR-Laserlinie:
Verwendung als zweite Bildgebungslinie/Zweitlaser zur simultanen Stimulation (optionaler SIM-Scanner) | – |
Feste 1045 nm-Linie von
INSIGHT X3 DUAL /DUALC-OL |
MAITAI HPDS-OL
MAITAI eHPDS-OL Chameleon Vision I Olympus Chameleon Vision II Olympus Chameleon Vision S Olympus | |
| Automatische Einfalloptik |
Einfalloptik mit AOM-Abschwächung
(0 %–100 % in Schritten von 0,1 %) Inkl. voll automatisierter Strahlexpander, XY-Shifter und Zwei-Achsen-Winkelausrichtung. (Optik zur automatischen Vierfach-Anpassung von 4 Achsen) Direktkopplung mit dem Lasereingang der Scanning-Einheit. |
Einfalloptik mit AOM-Abschwächung in 2 Sets (0 %–100 % in Schritten von 0,1 %)
Inkl. 2 Sets mit voll automatisiertem Strahlexpander, XY-Shifter und Zwei-Achsen-Winkelausrichtung. (Optik zur automatischen Vierfach-Anpassung von 4 Achsen) Direktkopplung mit dem Lasereingang der Scanning-Einheit. | ||
| Optik zur IR-Laser-Kombination | – | Motorisierter Lichtweg-Umschalter mit DM900, DM1000R, DM1100 zur Kombination von zwei IR-Wellenlängen für die Bildgebung | ||
| Optionaler Laser im sichtbaren Bereich zur Stimulation | 405 nm/50 mW, 458 nm/20 mW, 588 nm/20 mW Laserquelle mit AOTF-Abschwächung. 0 %–100 % in Schritten von 0,1 %, < 2 μs Anstiegszeit | |||
| Scanning-Einheit | Scan-Methode | Lichtablenkung über 2 silberbeschichtete Galvanometer-Scan-Spiegel oder einen silberbeschichteten Resonanz-Scan-Spiegel | ||
| Scanning-Geschwindigkeit |
Galvanometer-Scanner (normale Bildgebung): 512 × 512 mit 1,1 s–264 s, Pixeltakt: 2 μs–1000 μs
Resonanz-Scanner (Hochgeschwindigkeitsbildgebung): 30 fps bei 512 × 512, 438 fps bei 512 × 32 | |||
| Scan-Modus | XY, XYZ, XYT, XYZT, Freihandlinie, XZ, XT, XZT, PointT | |||
|
Galvanometer-Scanner
(Normale Bildgebung) |
Galvanometer-ROI-Scanning: Rechteck-Clip, Ellipse, Polygon, Freihandfläche, Linie, Freihandlinie und Punkt
Zoom: 1,0x–50,0x in Schritten von 0,01x, unterstützt Rotation und Schwenken um 0°–360° Scanfeldzahl: 18 Bildgröße: 64 × 64–4096 × 4096 | |||
|
Resonanz-Scanner
(Hochgeschwindigkeitsbildgebung) |
Resonanz-ROI-Scannen, Rechteck-Clip, Linie
Zoom: 1,0x–8,0x in Schritten von 0,01x Scanfeldzahl: 18 Bildgröße: 512 × 512 | |||
| Optische Beschichtung | IR-Support-Optik mit 1600er Beschichtung | |||
| Non-Descanned MPE Bildgebungsdetektoren |
Auflichtdetektion: 2- oder 4-Kanalkonfiguration: 2-PMT-Konfiguration, 4-PMT-Konfiguration oder Konfiguration mit 2 PMT + 2 gekühlten GaAsP-PMTs
Durchlichtdetektion: Einheit mit 2 PMTs und Kondensator mit hoher NA | |||
| Durchlicht-Detektor | Modul mit integriertem externem Durchlicht-Photomultiplier-Detektor und 100-W-Halogenlampe, motorisiertem Wechsel, faseroptischer Adapter für Mikroskopstativ | |||
| Z-Antrieb |
Integriertes motorisches Fokusmodul des Mikroskops, kleinster Schritt 0,01 μm
Optional: stabiler Piezo-Objektivrevolver*1 | |||
| Optionaler Scanner zur simultanen Stimulation |
Scanner zur hochsynchronen simultanen Stimulation, einschließlich eines Sets aus Galvanometer-Scanner, VIS- und IR-Lasereingang
ROI-Scanning: Rechteck-Clip, Ellipse, Polygon, Tornado, Freihandfläche, Linie, Freihandlinie und Punkt. | |||
| Optionale Analog- und Digital-E/A-Box | 4-Kanal-Analogsignal-Eingang, digitaler 6-Kanal-TTL-Trigger-Eingang, digitaler 5-Kanal-TTL-Trigger-Ausgang. Scanner-Timing-Ausgang | |||
| Betriebsumgebung | Raumtemperatur: 20 °C–25 °C, Feuchtigkeit: 75 % oder weniger bei 25 °C, erfordert kontinuierliche (24-stündige) Stromversorgung | |||
| Größe des erschütterungssicheren Tisches |
1500 mm × 1650* mm
*1800 mm bei dem Invers-Mikroskopsystem |
1500 mm × 1650* mm
*1800 mm bei dem Invers-Mikroskopsystem | 1500 mm × 2000 mm | |
| Software | Grundlegende Funktion |
Dunkelkammer-Design der GUI. Vom Anwender veränderbares Layout.
Ladefunktionen für Erfassungsparameter. Festplattenaufzeichnung möglich, Anpassung der Laserleistung und HV mit Z-Stapelerfassung. Z-Stapel mit Alpha-Blending, Projektion mit maximaler Helligkeit, ISO-Oberflächen-Rendering | ||
| IR-Lasersteuerung | Voll integrierte IR-Laser-Wellenlängensteuerung und Tieffokusmodus | |||
| Optionale Software für den motorisierten XY-Tisch |
Motorisierte XY-Tischsteuerung Profilbildaufnahme zur einfachen Lokalisierung von Zielobjekten. Kachelerfassung und Software-Bildstiching.
Definition mehrerer Bereiche für Zeitrafferaufnahmen. | |||
| Optionale Software für Mapping und Mehrpunktstimulation. |
Software für Mehrpunktstimulation und Datenerfassung. Mapping-Mehrpunktstimulation zur Erstellung eines Reaktionsprofils.
Filterfunktion zur Auswahl von Punkten. Mehrpunktstimulation. Einzel- oder Mehrfachstimulation. Unabhängige Auswahl der Stimulationswellenlänge für jeden Punkt. | |||
|
Optionaler Sequenz-
Manager |
Erweiterte programmierbare Software zum Definieren mehrerer Bildgebungs-/Stimulationsvorgänge und zu deren Ausführung durch einen Hardware-Sequenzer.
Mindestverzögerung von 100 ms zwischen den Vorgängen. | |||
| Optionale Autokompensationssoftware |
Software zur automatischen Kompensation der sphärischen Aberration.
Steuerung der Objektivlinse mit der Funktion zur automatischen Kompensation der sphärischen Aberration. Automatische Anpassung des motorisierten Korrekturrings, um die beste Position bei einer bestimmten Beobachtungstiefe zu finden. Automatische Anpassung des Korrekturrings bei der Z-Bewegung. | |||
*1 Nicht überall erhältlich.
TruResolution Objektive
| FV30-AC10SV | FV30-AC25W | |
|---|---|---|
| Vergrößerungen | 10 | 25 |
| Nummerische Apertur (NA) | 0,6 | 1,05 |
| AA | 8 mm | 2 mm |
| Deckglasdicke | 0 mm – 0,23 mm | 0 mm – 0,23 mm |
| Immersionsflüssigkeit | SCALEVIEW-A2 (für Wasser, Silikonöl und normales Öl) | Wasser |
| Besondere Eigenschaften | Autokompensation, optimiert für Multiphotonen-Bildgebung | Autokompensation, optimiert für Multiphotonen-Bildgebung |
| Abmessungen (B × T x H) |
56 mm × 106,5 × 95 mm
|
56 mm × 106,5 × 101 mm
|
| Gewicht | Etwa 1 kg | Etwa 1 kg |
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