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Vue d’ensemble
 | Excellente imagerie TIRF multicoloreConçu pour l’analyse de la dynamique membranaire, la détection de molécules uniques et les expériences de colocalisation, le système de microscope IXplore TIRF offre une imagerie TIRF multicolore simultanée pour jusqu’à 4 couleurs avec une stabilité élevée. |
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| TIRF multicolore simultanéLe système cellTIRF d’Olympus permet une réelle acquisition simultanée de quatre longueurs d’onde ou moins.
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Stabilité des imagesGrâce à l’architecture de la monture et à la conception du dispositif de réglage de la mise au point, le système IXplore offre une rigidité améliorée qui réduit l’impact des vibrations et de la température. Il conserve les positions souhaitées sur les axes X, Y et Z pour offrir plus de fiabilité pour les images multipoints et à prises intermittentes. Lorsqu’il est associé à la platine à ultrasons (IX3-SSU) et au système TruFocus d’Olympus, le système de microscope IXplore TIRF peut saisir des images intermittentes et multipoints très précises, qui sont alignées et mises au point. |  IX3-SSU |
| Objectifs TIRFLa microscopie de fluorescence par réflexion totale interne (TIRF) est facilitée par un large éventail d’objectifs qui offrent un rapport signal sur bruit élevé et une bague de correction pour effectuer les réglages selon l’épaisseur des lamelles couvre-objet et la température. Nos objectifs planapochromatiques corrigés avec une ouverture numérique de 1,5 vous aident à acquérir des images uniformes de haute qualité avec un plus grand champ d’observation. Profitez du remarquable objectif TIRF d’Olympus avec l’ouverture numérique de 1,7* la plus élevée au monde. * En date de novembre 2018, à la connaissance d’Olympus. En savoir plus sur nos objectifs à ouverture numérique élevée |
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Photomanipulation précise et intuitive (périphériques en option)Le dispositif de photomanipulation cellFRAP d’Olympus et le contrôleur en temps réel (U-RTCE) permettent un contrôle précis (temps de récupération de 200 µs), une stimulation limitée par diffraction avec une zone d’intérêt flexible et une reproduction précise des conditions expérimentales. |
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 | Analyse avancéeLes fonctionnalités avancées, telles que le suivi des objets, le comptage et la mesure, le kymographe et la déconvolution 2D en temps réel améliorent l’identification de l’objet. |
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Des dispositifs rapides et précis aux microsecondes prèsLa rapidité de la roue porte-filtres, de l’obturateur, de la commande de la source de lumière DEL et des contrôleurs en temps réel (U-RTC) réduisent le photoblanchiment et la phototoxicité, ce qui permet d’avoir des cellules plus saines et des données plus robustes. | Related Videos |
RéférencesY. Yang, et al. Spectraplakin induces positive feedback between fusogens and the actin cytoskeleton to promote cell-cell fusion. Developmental Cell (10 avril 2017). A. R. van Vliet, et al. The ER stress sensor PERK coordinates ER-plasma membrane contact site formation through interaction with filamin-A and F-actin remodeling. Molecular Cell (23 février 2017). F. Hertel, et al. RefSOFI for mapping nanoscale organization of protein-protein interactions in living cells. Cell Reports (31 décembre 2015). C. Cauvin, et al. Rab35 GTPase triggers switch-like recruitment of the lowe syndrome lipid phosphatase OCRL on newborn endosomes. Current Biology (24 décembre 2015). W.-K. Ji, et al. Actin filaments target the oligomeric maturation of the dynamin GTPase Drp1 to mitochondrial fission sites. eLIFE (26 novembre 2015). A. Juanes-Garcia, et al. A regulatory motif in nonmuscle myosin II-B regulates its role in migratory front–back polarity. The Journal of Cell Biology (13 avril 2015). D. Borrenberghs, et al. HIV virions as nanoscopic test tubes for probing oligomerization of the integrase enzyme. ACS Nano (21 mars 2014). S. Yamaoka, et al. Identification and dynamics of arabidopsis adaptor protein-2 complex and its involvement in floral organ development. The Plant Cell (23 août 2013) |
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Caractéristiques techniques
| Monture de microscope | IX83P2ZF | |
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| Méthode d’observation > Fluorescence par réflexion interne totale | ✓ | |
| Méthode d’observation > Fluorescence (excitation bleue/verte) | ✓ | |
| Méthode d’observation > Fluorescence (excitation ultraviolette) | ✓ | |
| Méthode d’observation > Contraste interférentiel différentiel (CID) | ✓ | |
| Méthode d’observation > Contraste de phase | ✓ | |
| Méthode d’observation > Fond clair | ✓ | |
| Tourelle porte-objectifs rotative > Motorisée (6 positions) | ✓ | |
| Mise au point > Motorisée |
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| Mise au point > Dispositif de compensation de la dérive en Z | ✓ | |
| Têtes d’observation > Champ large (numéro de champ : 22) > Binoculaire inclinable | ✓ | |
| Illuminateur > Illuminateur de Köhler à lumière transmise > Lampe à DEL | ✓ | |
| Illuminateur > Illuminateur de Köhler à lumière transmise > Lampe halogène de 100 W | ✓ | |
| Illuminateur > Illuminateur pour fluorescence > Lampe à mercure de 100 W | ✓ | |
| Illuminateur > Illuminateur pour fluorescence > Éclairage avec guide de lumière | ✓ | |
| Tourelle de miroirs à fluorescence > Motorisée (8 positions) | ✓ | |
| Platine > Motorisée | Contact your local sales representative to hear about motorized stage options | |
| Condenseur > Motorisé > Condenseur universel | Distance de travail 27 mm, ouverture numérique 0,55, ouverture motorisée et polariseur | |
| Condenseur > Réglage manuel > Condenseur universel | O. N. : 0,55 / Distance de travail : 27 mm | |
| Condenseur > Réglage manuel > Condenseur à ultra-grande distance de travail | O. N. : 0,3 / Distance de travail : 73,3 mm | |
| Scanner confocal | - | |
| Traitement pour très grande résolution | - | |
| Accessoires | Contrôleur de bague de correction à distance (IX3-RCC) | |
| Dimensions (L × P × H) | 323 (L) × 475 (P) × 706 (H) mm (statif de microscope IX83) | |
| Poids | Env. 47 kg (IX83P2ZF) |
Ressources
Autres systèmes
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