Biografia

O Dr. Liangyi Chen é Professor Boya da Universidade de Pequim. Obteve sua graduação em engenharia biomédica na Universidade Xi’an JiaoTong, em seguida, tornou-se PhD em engenharia biomédica pela Universidade de Ciências e Tecnologia Huazhong. Seu laboratório se concentrou em dois aspectos intrincados: o desenvolvimento de novos algoritmos de análise de formação de imagens e de imagens quantitativas e a aplicação dessas tecnologias para estudar como a secreção de insulina estimulada com glicose é regulada na saúde e na doença em vários níveis (células únicas, ilhotas e in vivo) em modelos animais saudáveis e doentes. As técnicas desenvolvidas incluíram microscopia de iluminação estruturada hessiana (Hessian SIM) ultrassensível para imagens de super-resolução de células vivas, o algoritmo de deconvolução esparsa para prolongar a resolução espacial de microscópios de fluorescência limitada pela óptica, a tomografia computadorizada de difração assistida por fluorescência de super-resolução (SR-FACT) para revelação da paisagem tridimensional da interatividade da organela celular, microscopia de luz-folha de rastreamento digital de dois fótons e três eixos (2P3A-DSLM) para formação de imagem de tecidos e pequenos organismos e microscopia de dois fótons em miniatura de alta resolução rápida (FHIRM-TPM) para imagens cerebrais de camundongos em comportamento livre. Ele também é beneficiário do projeto Fundo Acadêmico para Distinções Nacionais da Fundação Nacional de Ciências Naturais da China.

Resumo

Superando os limites de resolução física de microscópios de fluorescência com deconvolução esparsa

Durante esta sessão, o Dr. Chen apresentará dois métodos novos de microscopia de fluorescência de alta resolução inventados pelo seu laboratório para formação de imagens de amostras vivas:

"O primeiro é para formação de imagens de super-resolução (SR) de longo prazo de células vivas. Nós desenvolvemos um algoritmo de deconvolução para microscopia de iluminação estruturada baseada nas matrizes hessianas (Hessian-SIM). Ele usa a continuidade das estruturas biológicas em várias dimensões como um conhecimento a priori para orientar a reconstrução da imagem e alcança imagens de SR minimizadas de artefatos com menos de 10% da dose de fótons usada pela SIM convencional, ao mesmo tempo que supera substancialmente os algoritmos atuais em intensidades de baixo sinal. Sua alta sensibilidade permite o uso de pulsos de excitação em submilissegundos seguidos por tempos de recuperação escura para reduzir o fotobranqueamento das proteínas fluorescentes, permitindo a formação de imagens de SR por uma hora de duração em células vivas.

Após este trabalho inicial, percebemos que as resoluções espaciais de microscópios de super-resolução de células vivas são limitadas pelo fluxo máximo de fótons coletados. Aproveitando um conhecimento a priori da esparsidade e da continuidade das estruturas biológicas, desenvolvemos um algoritmo de deconvolução que prolonga ainda mais a resolução de microscópios de super-resolução sob a mesma provisão de fótons por quase o dobro. Como resultado, a microscopia de iluminação estruturada esparsa (Sparse-SIM) atinge uma resolução de ~60 nm a uma taxa de quadros de 564 Hz, permitindo resolver intermediários estruturais intrincados, incluindo pequenos poros de fusão vesiculares, poros nucleares em forma anelar formados por diferentes nucleoporinas e movimentos relativos entre a membrana interna e externa da mitocôndria em células vivas. Da mesma forma, a deconvolução esparsa pode ser usada para aumentar a resolução tridimensional e o contraste da SIM baseada em disco giratório confocal (SD-SIM) e opera sob condições de relação sinal-ruído insuficiente, o que permite a formação de imagem de super-resolução rotineira de células vivas com resolução tridimensional de ~90 nm em quatro cores. No geral, argumentamos que a deconvolução esparsa pode ser uma ferramenta geral para impulsionar os limites da resolução espaço-temporal da microscopia de fluorescência de células vivas."

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Krishanu Ray é membro da Academia Nacional Indiana de Ciências e Professor no Departamento de Ciências Biológicas do TIFR (Tata Institute of Fundamental Research - Instituto Tata de Pesquisa Fundamental), Mumbai, Índia. Concluiu seu mestrado em Biofísica, Biologia Molecular e Genética na Universidade de Calcutá e seu doutorado em Biologia Molecular no TIFR sob a égide da Universidade de Mumbai. Em seguida, trabalhou no Instituto de Biologia Celular Molecular, em Singapura, e no Instituto Médico Howard Hughes da Universidade da Califórnia, em San Diego, antes de ingressar no TIFR. Estabeleceu o laboratório no TIFR em 1998 para investigar a biologia celular molecular das proteínas motoras e estudar seu impacto no desenvolvimento e no comportamento de um organismo. Seu estudo se concentra em como a cinesina-2, um motor molecular, move proteínas solúveis e associadas a vesículas em axônios e cílios em resposta a estímulos externos. Ele também estuda como a tensão induz a montagem contrátil da actomiosina na membrana celular. O Dr. Ray utiliza ferramentas microscópicas para visualizar interações e dinâmicas proteína-proteína, bem como a distribuição subcelular de proteínas fluorescentes em neurônios de Drosófila e outros tecidos.

Resumo

Aplicações de Transferência ressonante de energia por fluorescência e Recuperação de fluorescência após fotobranqueamento in vivo usando drosófila como sistema modelo

A espectroscopia de fluorescência é usada para monitorar uma variedade de parâmetros e estados moleculares. A introdução de microscopia confocal e de proteínas fluorescentes geneticamente codificadas ampliou o escopo de aplicação desta técnica in situ para escalas celulares e subcelulares para monitorar as propriedades funcionais e a distribuição de proteínas endógenas em seu meio natural. Este seminário discutirá as aplicações de dois métodos específicos – Transferência ressonante de energia por fluorescência (FRET) e Recuperação de fluorescência após fotobranqueamento (FRAP) – em tecidos de drosófila viva. FRET é uma régua em escala molecular que pode determinar as distâncias entre duas partes de uma proteína e entre duas proteínas. Ela pode ser avaliada a partir dos dados de tempo de vida fluorescente e das alterações nas emissões do doador e do receptor. Usamos essa técnica para avaliar a dinâmica da interação entre as subunidades motoras da cinesina-2 e entre a colina acetiltransferase e o motor da cinesina-2 em axônios. FRAP é uma ferramenta simples e poderosa para determinar o fluxo de moléculas dentro de uma célula. Monitoramos o movimento de proteínas solúveis como a colina acetiltransferase no axônio, o correceptor do receptor de odorante nos cílios e a dinâmica da actina F em células somáticas ao redor de espermátides maduras usando FRAP. As aplicações destas ferramentas forneceram conhecimentos essenciais sobre os estados das interações proteína-proteína e da dinâmica dentro de uma célula em contextos biológicos específicos.

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O Dr. Zhixing Chen obteve um bacharelado em biologia química pela Universidade de Tsinghua (2008) e um doutorado em química pela Universidade de Columbia (2014, com os profs. Virginia Cornish e Wei Min). Ele teve treinamento adicional na Universidade de Stanford (Pós-doutorado 2016-2018 com o prof. Yan Xia), Universidade de Columbia (Pós-doutorado 2015) e Universidade de Pequim (Assistente residente 2008-2009). Zhixing é um químico com experiência em pesquisa abrangendo síntese de produtos naturais, química de polímeros, fluorescência e sondas ópticas não lineares, química de bioconjugação e formação de imagens de células vivas. Suas realizações notáveis incluem pesquisa envolvendo uma paleta vibracional, um grupo alcino e de nitrila editado isotopicamente para formação de imagens Raman multiplexadas e descompactação de lipídeos em forma de escada "ladderane", usando força mecânica para reconfigurar o polímero de um material isolante para um semicondutor. O foco atual de Zhixing é desenvolver novas ferramentas de formação de imagens com alta biocompatibilidade para promover tecnologias avançadas de bioimagem.

Resumo

Sondas delicadas para formação de imagens 4D

Os métodos modernos de formação de imagens de fluorescência prometem revelar a dinâmica das organelas em células vivas. No entanto, a fototoxicidade se tornou um problema predominante quando se aplica iluminação reforçada. De uma perspectiva química, Dr. Chen apresenta como projetar corantes orgânicos com fototoxicidade mínima com dois exemplos em marcadores mitocondriais e marcadores de secreção de insulina. Ressonando com o tema permanente de reduzir o fotodano usando abordagens ópticas, essas sondas biocompatíveis prometem oferecer informações espaço-temporais adicionais na era da fisiologia 4D.

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O Dr. Dayong Jin. é Professor Distinto da Universidade de Tecnologia de Sidney (UTS) desde 2017 e é Professor Catedrático da Universidade de Ciências e Tecnologia do Sul desde 2019.

O professor Jin obteve o seu doutorado na Universidade Macquarie em 2007. Na Macquarie, foi promovido a Professor Assistente em 2010, Professor Assistente Sênior em 2013, Professor Livre Docente em 2014 e Professor em 2015.

Na UTS, como diretor, ele estabeleceu o ARC IDEAL Hub (Australian Industry Transformation Research Hub for Integrated Devices for End-user Analysis at Low Levels - Centro de Pesquisa de Transformação da Indústria Australiana para Dispositivos Integrados para Análise de Usuário Final em Níveis Baixos), o DISER POCT (Department of Industry, Science, Energy and Resources’ Australia-China Joint Research Centre for Point of Care Testing - Centro de Pesquisa Conjunta Austrália-China do Departamento de Indústria, Ciência, Energia e Recursos para Testes no Ponto de Atendimento), o Centro de Pesquisa Conjunta UTS-SUStech para Materiais e Dispositivos Biomédicos, cujos três principais programas sustentam o IBMD (Institute for Biomedical Materials & Devices - Instituto de Materiais e Dispositivos Biomédicos) da UTS, para transformar os avanços em fonética e materiais em biotecnologias disruptivas.

Sua pesquisa tem sido nas ciências físicas, de engenharia e interdisciplinares, com especialidade em óptica biomédica, nanotecnologia, microscopia, diagnóstico e dispositivos microfluídicos.

O Prof. Jin é vencedor do Prêmio Eureka do Museu Australiano para Pesquisa Científica Interdisciplinar (2015), da Medalha John Booker da Academia Australiana de Ciências (2017) e do Prêmio do Primeiro-Ministro para Cientista Físico do Ano de 2017. Em 2021, o professor Jin ganhou o Australian Laureate Fellowship (bolsa de pesquisa docente australiana) e foi eleito membro da Academia Australiana de Tecnologia e Engenharia.

Resumo

Sistemas nanofotônicos de conversão ascendente para formação de imagens de super-resolução, rastreamento molecular único e ensaios digitais de alto rendimento

O Dr. Jin apresentará os recentes avanços feitos em nanofotônica, biofônica e biofotônica quântica que permitem sua transformação em sondas e sensores celulares com sensibilidade para molécula única.

"Em paralelo ao desenvolvimento das sondas moleculares, inventamos novas modalidades e desenvolvemos uma série de novos instrumentos para adquirir detalhes de alta dimensão e super-resolução de células vivas.

Em minha palestra, apresentarei os recentes avanços em uma nova família de 'Super Pontos' nanofotônicos que podem fazer a conversão ascendente de fótons infravermelhos em luz visível intensa em nanoescala. Cada Super Ponto pode ser altamente dopado com mais de 10^4 de íons de lantanídeos para alto brilho e respostas ópticas não lineares. Várias propriedades fascinantes foram descobertas desde então para permitir biodescobertas de alto rendimento, armazenamento de dados, laser de nanopartícula única e aplicações antifalsificação com alto nível de segurança, estabelecendo registros para rastreamento do transporte de molécula única, microscopia de super-resolução, termometria em nanoescala e, recentemente, ensaios digitais de molécula única de supercapacidade e pinças ópticas. A nossa pesquisa permitirá a formação de imagens de moléculas únicas e células vivas em seu ambiente fisiológico, para observar os compartimentos subcelulares em funcionamento e entender o mundo em nanoescala dentro das células vivas. Isso fornecerá um novo kit de ferramentas, análogo ao 'Street View' do Google, que permitirá aos pesquisadores 'desdobrar' e observar os detalhes do 'tráfego subcelular ao vivo', decodificar as complexidades do maquinário das ciências da vida e detectar problemas de saúde antes que eles se tornem críticos."

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O professor Gibson obteve seu doutorado na Universidade La Trobe em 2004. De 2005 a 2009, foi engenheiro de desenvolvimento fotônico na Quantum Communications Victoria (QCV), onde ele e seus colegas projetaram e desenvolveram o primeiro produto comercial de segurança quântica da Austrália (QCV SPS 1.01). Em 2011, ele foi premiado pelo ARC (Australian Research Council - Concelho Australiano de Pesquisa) com uma Future Fellowship (bolsa de pesquisa) para materiais de diamante híbrido para dispositivos de detecção, biodiagnóstico e quânticos de próxima geração. O Prof. Gibson está atualmente nas funções conjuntas de Vice-Diretor Assistente (Física, Universidade RMIT), Vice-Diretor e Líder de Nó da RMIT do Centro de Excelência do ARC para Biofotônica em Nanoescala e Vice-Diretor do Centro Sir Lawrence Wackett para Defesa da Universidade RMIT. Ele tem amplos interesses de pesquisa nas áreas de diamante, nanossondas fluorescentes, materiais para lacuna de banda larga, fontes de fóton único, sensores quânticos, integração de nanomaterial híbrido, fibra óptica, fotônica, biofotônica, microscopia óptica, confocal e de força atômica, e tem mais de 100 publicações em periódicos arbitrados.

Resumo

Biofotônica em nanoescala: uso de imagens multimodais para entender o funcionamento interno do corpo

As ferramentas de formação de imagem e detecção baseadas em luz podem ajudar na nossa compreensão dos complexos processos químicos e moleculares que acontecem dentro e ao redor das células no corpo vivo [1]. Nanodiamantes fluorescentes (NDs) são uma atraente ferramenta de nanoescala que possui uma variedade de propriedades únicas que os tornam altamente desejáveis para aplicações de bioimagem e biossensores [2]. Sua fluorescência é produzida via excitação óptica de defeitos atômicos, como o centro de vacância de nitrogênio carregado negativamente, dentro da rede cristalina do diamante. Possuindo emissão de longo comprimento de onda, alto brilho, ausência de fotobranqueamento, ausência de fotopiscagem, tamanho nanométrico, sensibilidade à temperatura ambiente para campos magnéticos e de micro-ondas e uma resistência excepcional à degradação química, os NDs tornam-se quase a nanossonda de bioimagem fluorescente ideal [3]. Eu discutirei essas propriedades empolgantes em detalhes e darei alguns exemplos do efeito da funcionalidade da superfície em suas propriedades fluorescentes [4], seu uso como sondas fluorescentes para detecção de pH [5] e de peróxido de hidrogênio em sistemas biológicos [6] e o efeito do tamanho da partícula na fluorescência do nanodiamante e as propriedades coloidais em meios biológicos [7]. Além disso, também discutirei aplicações de biossensores híbridos, incluindo a incorporação de NDs em materiais eletrofiados de policaprolactona [8] e seda [9].

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O Dr. Karthik Mallilankaraman obteve seu doutorado em microbiologia médica na Universidade de Madras, Índia. Ele se mudou para a Universidade de Pensilvânia, na Filadélfia, Pensilvânia, para concluir uma bolsa de pós-doutorado com o professor David Weiner no desenvolvimento de vacinas de DNA para o vírus Chikungunya. Em seguida, ele se mudou para a Temple University, na Filadélfia, para estudar o uniportador de cálcio mitocondrial, onde identificou a subunidade reguladora do uniportador MCUR1 e descobriu o gatekeeper do uniportador, que estabelece o ponto de ajuste da captação de cálcio mitocondrial. Por essas contribuições, ele recebeu em 2013 o Young Bioenergeticist Award (Prêmio Jovem Bioenergeticista) da Biophysical Society. Para entender melhor a regulação de cálcio na matriz mitocondrial, ele voltou para a Universidade da Pensilvânia (laboratório Foskett) e trabalhou nos mecanismos regulatórios do uniportador de cálcio mitocondrial. O Dr. Karthik se mudou para Singapura em 2015 e iniciou o seu grupo de pesquisa independente no Departamento de Fisiologia da YLL School of Medicine, da Universidade Nacional de Singapura.

Resumo

Regulação complexa do complexo uniportador de cálcio mitocondrial

A respiração celular em eucariotos ocorre nos modos aeróbico e anaeróbico; no entanto, a maior parte da energia é derivada da respiração aeróbica. As fases aeróbicas ocorrem dentro de organelas chamadas mitocôndrias em duas etapas: o Ciclo de Krebs e a cadeia de transporte de elétrons. As mitocôndrias às vezes são chamadas de "usinas de energia" da célula, pois são as organelas que geram a maior parte do suprimento de trifosfato de adenosina (ATP) da célula. Curiosamente, a respiração aeróbica é regulada por um segundo mensageiro importante: o cálcio. O cálcio na matriz mitocondrial age como um cofator no ciclo de Krebs e na cadeia de transporte de elétrons.

Minha palestra se concentrará em como o cálcio entra na matriz mitocondrial através de um canal iônico fortemente regulado embutido na membrana mitocondrial interna. O uniportador de cálcio mitocondrial (MCU) é o canal iônico seletivo de Ca2+-localizado na membrana mitocondrial interna (IMM) que faz a mediação de captação de Ca2+ na matriz mitocondrial do citoplasma para regular o metabolismo, a morte celular e a sinalização citoplasmática de Ca2+. O uniportador de Ca2+ mitocondrial é um complexo de proteínas, incluindo a subunidade formadora de poros MCU e proteínas acessórias, incluindo MICU1, MICU2, MCUR1 e EMRE. Descobrimos que a MCUR1 é o regulador positivo do uniportador e que a função da MICU1 é fazer o gatekeeping da MCU. A perda de MCUR1 diminui a captação de cálcio mitocondrial e diminui a produção de ATP, ativando a autofagia pró-sobrevivência mediada pela AMPK. Mas a perda de MICU1 resulta na ativação constitutiva de MCU, no aumento da captação mitocondrial de Ca2+ em baixa citoplasmática [Ca2+] e na sobrecarga de Ca2+ mitocondrial. Nós fomos os primeiros a demonstrar que a MICU1 fornecia uma função de gatekeeping que reduz a permeabilidade do uniportador in situ abaixo de um valor limite de 1-3 μM de Ca2+ externo livre para evitar a sobrecarga de Ca2+ mitocondrial em condições basais. Embora existisse controvérsia sobre a localização da MICU1, a maioria dos estudos, incluindo o nosso trabalho recente, sugere a localização do espaço intermembranar da MICU1 e da MICU2. Assim, a mitocôndria é protegida tanto pela depleção de Ca2+ em condições de baixo Ca2+ quanto da sobrecarga de Ca2+ em condições normais de repouso por um complexo molecular único que envolve sensores de Ca2+ em ambos os lados da IMM, MICU1 e MICU2 do lado da IMS e os componentes de detecção de Ca2+ da matriz desconhecida do complexo uniportador.

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Shaoling Qi é gerente de produto sênior de ciências da vida na Olympus China. Ela entrou para a ciências da vida da Olympus como especialista em aplicações logo após a conclusão de seu mestrado na Escola de Ciências da Vida, na Universidade Tsinghua em 2009. Com anos de experiência prática e de conhecimento na aplicação de microscopia avançada, Shaoling ajuda cientistas a identificar e aplicar soluções de formação de imagem que suportam e avançam seus objetivos de pesquisa. Atualmente, ela está no comando dos negócios de personalização na China e é responsável pela gestão de produtos de ciências da vida, pelo marketing e pelo suporte de vendas de sistemas de formação de imagem de ponta, como tecnologia confocal, multifóton e de super-resolução.

Resumo

Detalhes impressionantes em células vivas usando o sistema IXplore SpinSR da Olympus

A formação de imagens de super-resolução de células vivas é agora uma crescente tendência de aplicação em ciências da vida, pesquisa clínica e estudos de medicina regenerativa. No entanto, sempre se tem que renunciar a alguma coisa entre resolução espacial, resolução temporal e fototoxicidade, tornando-se um desafio significativo para investigar a fina dinâmica estrutural nas células. Desenvolvemos soluções de hardware e software para superar esses desafios. Nesta sessão, discutirei como o sistema IXplore SpinSR da Olympus combina velocidade, sensibilidade e resolução para a formação de imagem de super-resolução compatível com células vivas. Também apresentarei vários exemplos de aplicações nas quais o sistema IXplore SpinSR da Olympus tem sido eficaz.

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O Dr. Bin Guan é atualmente bolsista de pós-doutorado na Escola de Agricultura e Biologia da Universidade Jiao Tong de Xangai. Bin Guan fez o seu doutorado em genética no National Key Laboratory of Plant Molecular Genetics (Laboratório-chave nacional de genética molecular vegetal), CAS Center for Excellence in Molecular Plant Sciences (Centro de excelência da CAS em ciências moleculares de vegetais), CAS (Chinese Academy of Sciences - Academia Chinesa de Ciências) em 2021. Seu interesse de pesquisa inclui fosfolipídios e autofagia.

Resumo

Realocação mitocondrial de um antibiótico sintético comum: uma abordagem não genotóxica à terapia oncológica

A separação de fase desempenha um papel importante em vários processos fisiológicos e de sinalização nas células animais e vegetais, formando domínios espaciais relativamente independentes que enriquecem as moléculas seletivamente e formam estruturas únicas. A autofagia, um mecanismo de degradação altamente regulado nas células eucarióticas, demonstrou degradar condensados líquidos, e estruturas pré-autofagosomais (PAS) também sofrem separação de fase líquido-líquido para regular a formação de autofagossoma. Embora a proteína da ubiquitina ATG8 desempenhe um papel central na modificação de autofagossomas e recrutando cargas específicas para os autofagossomas, não está claro se a ATG8 sofre separação de fase para regular a biossíntese de autofagossoma. Neste estudo, observações citológicas sistemáticas revelaram que a Arabidopsis ATG8e pode separar por fase in vivo e in vitro, e que as regiões intrinsecamente desordenadas (IDR) no seu terminal N estão envolvidas na formação de separação de fase. O tratamento com inibidores de separação de fase e a observação de material genético sugerem que a separação de fase líquido-líquido da ATG8e desempenha um papel importante na autofagia. Outros estudos mostraram que a proteína ATG3 associada à autofagia aumenta a separação de fase da ATG8e e, por sua vez, promove a autofagia. Curiosamente, a região do terminal N das homólogas da ATG8e em levedura e mamíferos, Atg8 e LC3 (três membros), também é uma IDR, sugerindo que a separação de fase pode existir entre a LC3 de mamíferos e a Atg8 de levedura e que essa separação de fase está envolvida na regulação da autofagia em células de mamíferos. Este estudo demonstra a existência e a importância da separação de fase na autofagia, e fornece pistas importantes para o estudo aprofundado do mecanismo de regulação molecular da autofagia.

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Jong Seung Kim fez o seu doutorado no Departamento de Química e de Bioquímica da Universidade de Tecnologia do Texas em 1993. Ele também possui um ano de experiência de pesquisa de pós-doutorado na Universidade de Houston. Atualmente, é professor titular do Departamento de Química da Universidade da Coreia em Seul. Ele é membro da Academia Coreana de Ciências e Tecnologia desde 2014. Publicou cerca de 530 artigos em periódicos de prestígio com um índice h de 104. Seus interesses de pesquisa são a aplicação de química orgânica na entrega de fármacos e em teranósticos de várias patologias, incluindo doença de Alzheimer e neoplasias malignas e suas imagens de super-resolução. Ele tem sido nomeado como Pesquisador Altamente Citado desde 2014.

Resumo

Realocação mitocondrial de um antibiótico sintético comum: uma abordagem não genotóxica à terapia oncológica

A recorrência tumoral por causa de lesões de DNA nuclear induzidas pela terapia é uma questão importante no tratamento do câncer. Atualmente, apenas poucos exemplos de fármacos potencialmente não genotóxicos foram relatados. O Dr. Kim discute aqui uma nova abordagem para gerar tais protótipos, que envolve a relocalização mitocondrial da ciprofloxacina, um dos antibióticos sintéticos mais prescritos. Uma estratégia de conjugação racionalmente concebida, envolvendo a ligação de ciprofloxacina a um grupo trifenilo fosfonium (dando o protótipo Mt-CFX), é usada para melhorar a concentração de ciprofloxacina na mitocôndria das células cancerígenas. O suporte a esta localização proposta veio de um análogo do Mt-CFX com uma sonda fluorescente. A localização do Mt-CFX para a mitocôndria induz danos oxidativos para proteínas, mtDNA e lipídios. Um grande viés a favor do dano do mtDNA em detrimento do nDNA foi visto com o Mt-CFX, enquanto o resultado oposto foi obtido para várias quimioterapêuticas clássicas para câncer. Detectou-se que o Mt-CFX produz uma redução estatisticamente significativa no crescimento do câncer em um modelo de xenotransplante em camundongo. Também comprovou ser geralmente bem tolerado. Em conjunto, essas descobertas levaram o Dr. Kim e seus colegas a sugerir que a relocalização mitocondrial de antibióticos poderia surgir como uma abordagem útil para gerar protótipos anticâncer que promovam a morte celular através da indução seletiva de danos oxidativos mitocondrialmente mediados.

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O Dr. Xueliang Zhu concluiu o seu bacharelado (1985) e mestrado (1988) no Departamento de Biologia da Universidade de Ciências e Tecnologia da China e foi contratado como professor assistente. Ele foi para a Universidade da Califórnia, em San Diego, e para o Instituto de Biotecnologia do Centro de Ciências da Saúde da Universidade do Texas, em San Antonio, para a sua dissertação como estudante de graduação conjunta (1990-1994) e concluiu o seu doutorado (1995) no Instituto de Biologia Celular de Xangai, da Academia Chinesa de Ciências (CAS). Após o seu pós-doutorado (1995-1997) no Centro de Pesquisa de Ciências da Vida de Xangai, da CAS, ele se tornou Investigador Principal no centro. Ele foi para o Instituto de Bioquímica e Biologia Celular de Xangai em 1999. Ele é um biólogo celular, principalmente interessado em funções e estruturas subcelulares dependentes do citoesqueleto.

Resumo

Mais alto, mais rápido, mais forte: formação de imagem fluorescente para atividades relacionadas ao citoesqueleto

A resolução espaço-temporal é o maior fator de limitação na projeção de imagens de estruturas subcelulares ou de suas atividades dinâmicas. Os cílios, por exemplo, têm aproximadamente 250-nm de diâmetro, mas contêm ultraestrutura elegante e maquinários de transporte intraflagelar bidirecional (IFT) essenciais para a importação de proteína e exportação para o corpo celular. Além disso, os cílios motile podem bater rapidamente (10 Hz ou mais) e existem em centenas por célula. Nesta apresentação, o Dr. Zhu compartilha algumas das suas experiências e de seus colegas com imagens obtidas durante sua pesquisa, que rivaliza até mesmo com os mais recentes microscópios fluorescentes de ponta.

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O Sr. Mitsuru Araki é Vice-Gerente Geral do Departamento de Suporte de Vendas na Olympus China. Ele é bacharelado em Física Aplicada na Universidade Tohoku, no Japão. Ele entrou para a Olympus Japão em 2009 como engenheiro de serviço técnico. Em 2012, transferiu-se para a Olympus Índia e estabeleceu uma equipe de serviço técnico para os negócios de microscopia. Em 2015, voltou para o Japão para aceitar o cargo de gerente de produto de software de formação de imagem e de suporte de vendas para o mercado chinês de ciências da vida. Em 2020, transferiu-se para a Olympus China e atualmente está no comando do suporte de vendas e marketing de produtos de ciências da vida.

Resumo

Demonstração ao vivo: Fotomanipulação flexível, precisa e rápida usando o sistema IXplore™ Spin e o Módulo cellFRAP da Olympus

A fotomanipulação é um fator essencial para várias técnicas de formação de imagem, como FRAP, FLIP, fotoativação, uncaging etc., para estudar a dinâmica da proteína em células vivas. Por exemplo, na FRAP, uma área específica de um corante fluorescente ou uma proteína marcada com fluorescência em uma célula é branqueada e a recuperação da fluorescência é observada para examinar a fluidez do alvo. Essas técnicas de formação de imagem são empregadas em vários campos de aplicação; no entanto, estimular o alvo com precisão em uma célula viva se movendo dinamicamente ainda é desafiador. O sistema IXplore Spin da Olympus oferece rápida formação de imagem confocal e o nosso módulo cellFRAP torna possível uma fotoestimulação precisa, rápida e flexível. Nesta sessão, demonstraremos os benefícios da combinação do IXplore Spin com o cellFRAP para experimentos de FRAP.

Biografia

O Sr. Srivats Hariharan é Gerente de Marketing e Aplicações da Olympus região Ásia-Pacífico (APAC). Ele é bacharelado em Engenharia Mecânica na Universidade Tecnológica Nanyang, Singapura. Ele tem experiência de trabalho em laboratórios de pesquisa biomédica e em uma instalação principal de microscopia A*STAR, onde deu suporte para pesquisadores de tecnologias de formação de imagem confocal e de células vivas, e ajudou a criar os microscópios light sheet e de super-resolução de molécula única. Ingressou na equipe de ciências da vida da Olympus Singapura em 2011 como gerente de produto e está no comando do suporte a clientes de pesquisa e parceiros de negócios no Sudeste Asiático e em Taiwan. Atualmente, está no comando de todas as atividades relacionadas ao marketing de ciências da vida na APAC.

Resumo

Demonstração ao vivo: Microscópio confocal de rastreamento a laser com infravermelho próximo Olympus FLUOVIEW™ FV3000

Microscópios de excitação de dois fótons, como o sistema Olympus FVMPE-RS, há muito vêm sendo vistos como a escolha ideal para formação de imagens profundas, pois usam lasers infravermelhos que se dispersam menos e reduzem significativamente o fotobranqueamento e a fototoxicidade em amostras biológicas vivas e fixas. No entanto, tem havido uma crescente demanda por sistemas de fóton único, como o microscópio confocal de rastreamento a laser Olympus FV3000, que é capaz de usar NIR (near-infrared - infravermelho próximo) para multiplexagem de fluorescência, formação de imagens profundas e formação de imagens de células vivas. Juntamente com as lentes objetivas avançadas X Line e A Line da Olympus, a formação de imagem NIR pode fornecer imagens claras e de alta resolução profundas dentro do espécime biológico. Corantes orgânicos e proteínas fluorescentes, incluindo Cy7, Cy7.5, Alexa Fluor750, Alexa Fluor790 e iRFPs, podem agora ser facilmente projetadas em conjunto com marcadores regulares no alcance visível. Nesta sessão, demonstraremos como configurar e usar o microscópio Olympus FV3000 para formação de imagem NIR.

Biografia

O Dr. Lin obteve seu doutorado em 2010 na Universidade Nacional de Singapura, trabalhando em pesquisa biofísica. Em 2009, ele ingressou na Olympus como especialista técnico e de aplicações para nossos sistemas de formação de imagem de ponta baseados em laser. Em 2012, Lin decidiu voltar para a China, assumindo um cargo em um dos principais fabricantes de câmeras científicas, a Photometrics. Lá, começou como especialista em aplicações, mais tarde se tornou gerente regional de vendas e, por fim, gerente de vendas científicas da região Ásia-Pacífico. Em 2021, Lin retornou para Singapura, ingressando na Olympus Singapura como gerente de produtos e aplicações. Lin tem vasta experiência com diversas técnicas de formação de imagem digital científica, incluindo várias tecnologias de câmera.

Resumo

Demonstração ao vivo: Microscópio confocal de rastreamento a laser com infravermelho próximo Olympus FLUOVIEW™ FV3000

Microscópios de excitação de dois fótons, como o sistema Olympus FVMPE-RS, há muito vêm sendo vistos como a escolha ideal para formação de imagens profundas, pois usam lasers infravermelhos que se dispersam menos e reduzem significativamente o fotobranqueamento e a fototoxicidade em amostras biológicas vivas e fixas. No entanto, tem havido uma crescente demanda por sistemas de fóton único, como o microscópio confocal de rastreamento a laser Olympus FV3000, que é capaz de usar NIR (near-infrared - infravermelho próximo) para multiplexagem de fluorescência, formação de imagens profundas e formação de imagens de células vivas. Juntamente com as lentes objetivas avançadas X Line e A Line da Olympus, a formação de imagem NIR pode fornecer imagens claras e de alta resolução profundas dentro do espécime biológico. Corantes orgânicos e proteínas fluorescentes, incluindo Cy7, Cy7.5, Alexa Fluor750, Alexa Fluor790 e iRFPs, podem agora ser facilmente projetadas em conjunto com marcadores regulares no alcance visível. Nesta sessão, demonstraremos como configurar e usar o microscópio Olympus FV3000 para formação de imagem NIR.