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Übersicht
 | Präzise Lebendzell-MikroskopieDas IXplore Live Mikroskopsystem wurde für die präzise Bildgebung von Lebendzellen entwickelt und trägt dazu bei, die Photobleichung zu reduzieren und die Zelllebensfähigkeit für physiologische Experimente zu verbessern. |
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 Inkubationssystem  Tisch-CO2-Inkubator (hergestellt von Tokai Hit Co., Ltd.)  Tisch-CO2-Inkubator (hergestellt von Tokai Hit Co., Ltd.) | Anforderungen von Lebendproben berücksichtigenLebendzellen benötigen eine sorgfältige Einhaltung ihrer Umgebungsbedingungen, um zu wachsen und zu gedeihen. Wir bieten eine Vielzahl von mikroskopbasierten Inkubationssystemen an, um neuen Forschungsanforderungen gerecht zu werden. Kastenförmige Inkubationssysteme* ermöglichen Zeitrafferbeobachtungen über einen Zeitraum von mehreren Tagen, da sich ein Teil des Mikroskops im Inkubator befindet. Mit den CO2-Inkubationssystemen* des Tischmikroskops, die auf dem Tisch montiert und bei Nichtgebrauch leicht entfernt werden können, können Zeitraffer-Experimente verkürzt werden. Beide Systeme werden präzise geregelt, um konstante Umgebungsbedingungen (Temperatur, Luftfeuchtigkeit und CO2-Konzentration) für die Schalen oder Mikrotiterplatten aufrechtzuerhalten. Dadurch bleibt die Zellaktivität erhalten, die Zuverlässigkeit der Zeitraffer-Beobachtung wird deutlich verbessert und es werden aussagefähigere Daten erfasst. *Produkte von Drittanbietern. |
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Ständige Kontrolle der UmgebungsbedingungenIn diesem SelectScience Interview beschreibt Mikroskopie-Expertin Jutta Bulkescher vom Center for Protein Research/Danish Stem Cell Center der Universität Kopenhagen, Dänemark, die vielfältigen Forschungsprojekte, an denen in ihrer Einrichtung gearbeitet wird, und erläutert, wie das Inkubationssystem cellVivo von Olympus dank strikter Aufrechterhaltung physiologischer Bedingungen eine zuverlässige Analyse von Stammzellen ermöglicht. |
Hardware-StabilitätDie Stativbauweise und die Gestaltung der Fokustriebe des IXplore Systems bieten eine höhere Stabilität, sodass der Einfluss von Erschütterungen und Temperaturschwankungen auf das Mikroskop gemindert wird. Die gewünschte Fokusposition auf der Z-Achse wird für eine zuverlässige Zeitraffer-Bildgebung beibehalten. Bei Kombination des IXplore Live-Systems mit dem TruFocus-System lassen sich hochpräzise, ausgerichtete und scharfe Zeitraffer-Bilder aufnehmen. |
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Lebendzell-BildgebungOlympus Silikonöl-Immersionsobjektive liefern bei Zeitraffer-Experimenten klarere Bilder von lebenden Proben. Der Brechungsindex von Silikonöl (ne≈1,40) ist fast identisch mit dem von lebendem Gewebe (ne≈1,38), sodass diese Objektive die durch Brechungsindex-Fehlanpassung verursachte sphärische Aberration reduzieren und eine hochauflösende Beobachtung tief im lebenden Gewebe ermöglichen. Silikonöl trocknet nicht aus und verharzt nicht. Das Öl muss nicht aufgefüllt werden und eignet sich daher ideal für längere Zeitrafferaufnahmen. |   |
Related Videos | Mikrosekundengenaue GerätesteuerungSchnelle Filterräder, Verschlüsse, die individuelle LED-Beleuchtungssteuerung und der Echtzeit-Controller (U-RTC) reduzieren Photobleichung und Phototoxizität, sodass die Zellen gesünder bleiben, und die Daten zuverlässiger sind. |
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Überwachung der Zellmigration und des ZellwachstumsAnalyse der Bewegung und Teilung von Lebendzellen in Zeitraffer oder mit Z-Stapel-Bildsätzen und cellSens Objekt-Tracking sowie Lösungen zum Zählen und Messen. Messung der Konfluenz von Phasenkontrastbildern mit den Confluency Checker-Tools zusätzlich zur Fluoreszenz. |  |
 Links: Ohne TruSight/Rechts: Mit TruSight | Schnelle DekonvolutionDie cellSens Dimension Software von Olympus führt eine Live-2D-Schärfung für die Vorschau und Bilderfassung durch, sodass dicke Proben besser fokussiert werden können. Mit der moderneren TruSight Dekonvolution lässt sich unscharfes Licht durch die CI-Dekonvolutionslösung neu zuordnen. TruSight arbeitet mit einen eingeschränkten iterativen Dekonvolutionsalgorithmus, um Verbesserungen bei Auflösung, Kontrast und Dynamik bei hoher Geschwindigkeit durch die GPU-Verarbeitung zu erreichen. Um die Effizienz des Experiments zu verbessern, kann die Dekonvolutionsverarbeitung als Makrofunktion im Graphical Experimental Manager (GEM) definiert werden. |
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Großes SichtfeldDas große Sichtfeld der Optik von Olympus sowie die Spiegelmodule und die Fly-Eye-Linsensysteme erlauben homogene Fluoreszenzaufnahmen und ermöglichen die Verwendung von sCMOS-Kameras mit großen Sensoren. |   |
| AnwenderfreundlichDer Graphical Experimental Manager (GEM) der cellSens Dimension Software ermöglicht eine vollautomatische multidimensionale Beobachtung (X, Y, Z, T, Wellenlänge und Positionen) und erleichtert den Versuchsaufbau. Um die Effizienz zu erhöhen, können Sie im GEM Makrofunktionen definieren, z. B. die Ausführung der Dekonvolutionsverarbeitung. |
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LiteraturnachweiseS. Wakayama, et al. Chemical labelling for visualizing native AMPA receptors in live neurons. Nature Communications (7. April 2017). S. N. Cullati, et al. A bifurcated signaling cascade of NIMA-related kinases controls distinct kinesins in anaphase. The Journal of Cell Biology (19. Juni 2017). L. Gheghiani, et al. PLK1 activation in late G2 sets up commitment to mitosis. Cell Reports (6. Juni 2017). D. Nakane and T. Nishizaka, et al. Asymmetric distribution of type IV pili triggered by directional light in unicellular cyanobacteria. PNAS (5. Juni 2017). DUSATKO, T. A. Redchuk, et al. Near-infrared optogenetic pair for protein regulation and spectral multiplexing. Nature Chemical Biology (27. März 2017). S. Barzilai, et al. Leukocytes breach endothelial barriers by insertion of nuclear lobes and disassembly of endothelial actin filaments. Cell Reports (17. Januar 2017). J. Humphries, et al. Species-independent attraction to biofilms through electrical signaling. Cell (12. Januar 2017). A. Prindle, et al. Ion channels enable electrical communication in bacterial communities. Nature (21. Oktober 2015). K. G. Harris, et al. RIP3 regulates autophagy and promotes coxsackievirus B3 infection of intestinal epithelial cells. Cell Host & Microbe (13. August 2015). |
Für Unterstützung |
Spezifikationen
| Mikroskopstativ | IX83P2ZF | |
|---|---|---|
| Mikroskopieverfahren > Fluoreszenz (Anregung durch blaues/grünes Licht) | ✓ | |
| Mikroskopieverfahren > Fluoreszenz (Anregung durch ultraviolettes Licht) | ✓ | |
| Mikroskopieverfahren > Differenzieller Interferenzkontrast (DIC) | ✓ | |
| Mikroskopieverfahren > Phasenkontrast | ✓ | |
| Mikroskopieverfahren > Hellfeld | ✓ | |
| Objektivrevolver > Motorisiert (6 Positionen) | ✓ | |
| Fokus > Motorgesteuert |
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| Fokus > Z-Drift-Kompensator | ✓ | |
| Beobachtungstuben > Weitfeld (FN 22) > Schwenkbarer Binokulartubus | ✓ | |
| Beleuchtung > Köhlersche Durchlichtbeleuchtung > LED-Lampe | ✓ | |
| Beleuchtung > Köhlersche Durchlichtbeleuchtung > Halogenlampe 100 W | ✓ | |
| Beleuchtung > Fluoreszenz-Beleuchtung > Quecksilberlampe 100 W | ✓ | |
| Beleuchtung > Fluoreszenz-Beleuchtung > Lichtleiter-Beleuchtungsgerät | ✓ | |
| Fluoreszenzmodul-Revolver > Motorisiert (8 Positionen) | ✓ | |
| Tisch > Motorgesteuert | Contact your local sales representative to hear about motorized stage options | |
| Tisch > Mechanischer > Mechanischer Kreuztisch mit Rechtstrieb IX3-SVR |
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| Tisch > Mechanischer > Mechanischer Kreuztisch mit kurzem Linkstrieb IX3-SVL |
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| Kondensor > Motorisiert > Universalkondensor | Arbeitsabstand 27 mm, NA 0,55, motorgesteuerte Blende und Polarisationsfilter | |
| Kondensor > Manuell > Universalkondensor | NA 0,55/A.A. 27 mm | |
| Kondensor > Manuell > Kondensor mit sehr großen Arbeitsabstand | NA 0,3/A.A. 73,3 mm | |
| Konfokaler Scanner | - | |
| Verarbeitung mit Superauflösung | - | |
| Zubehör | Korrekturring-Fernsteuerung (IX3-RCC) | |
| Abmessungen (B × T × H) | 323 (B) x 475 (T) x 706 (H) mm (Mikroskopstativ IX83) | |
| Gewicht | Etwa 47 kg (IX83P2ZF) |
Multimedia
Andere Systeme
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