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	FLUOVIEW der nächsten Generation für die nächste Revolution in der Wissenschaft Mit den konfokalen Laser-Scanning-Mikroskopen der Serie FLUOVIEW FV3000 lassen sich einige der schwierigsten Herausforderungen in der modernen Wissenschaft meistern. Das FV3000 Konfokalmikroskop besitzt die hohe Empfindlichkeit und Geschwindigkeit, die für die Bildgebung von lebenden Zellen sowie für die Betrachtung tiefer Gewebeschichten erforderlich sind, und unterstützt eine breite Palette von Bildgebungsmodalitäten, beispielsweise Makro- und Mikro-Beobachtung, Mikroskopie mit Superauflösung und die quantitative Datenanalyse. This product has been discontinued, check out our current product

FLUOVIEW der nächsten Generation für die nächste Revolution in der Wissenschaft

Mit den konfokalen Laser-Scanning-Mikroskopen der Serie FLUOVIEW FV3000 lassen sich einige der schwierigsten Herausforderungen in der modernen Wissenschaft meistern. Das FV3000 Konfokalmikroskop besitzt die hohe Empfindlichkeit und Geschwindigkeit, die für die Bildgebung von lebenden Zellen sowie für die Betrachtung tiefer Gewebeschichten erforderlich sind, und unterstützt eine breite Palette von Bildgebungsmodalitäten, beispielsweise Makro- und Mikro-Beobachtung, Mikroskopie mit Superauflösung und die quantitative Datenanalyse.

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Hochempfindliches Bildmultiplexing von Violett bis NIR-Licht

Die TruSpectral Detektoren des FV3000 Konfokalmikroskops kombinieren hohe Empfindlichkeit mit spektraler Flexibilität und erkennen so selbst schwächste Fluorophore.

Durch die Implementierung des holografischen Volumenphasen-Beugungsgitters (VPH) erreicht die TruSpectral Technologie eine bis zu 3x höhere Lichtdurchlässigkeit im Vergleich zur herkömmlichen spektralen Detektionstechnologie.
Sie bietet unabhängig voneinander einstellbare Kanäle zur Optimierung der Signalerkennung für jeden einzelnen Fluorophor. Der variable Sperrfiltermodus erfasst gleichzeitig Bilder in vier Kanälen, im sequenziellen Modus in bis zu sechzehn Kanälen.
Der Lambda-Abtastmodus ermöglicht eine präzise spektrale Entmischung komplexer, sich überlappender Fluoreszenzsignale.

Durch verschiedene sorgfältig entwickelte NIR-Upgrades vergrößert unsere neue FV3000 Lösung für Nah-Infrarot (NIR) die Wellenlängenerkennungsfähigkeiten des FV3000 Mikroskops bis 890 nm:

730 nm oder 785 nm Laser und ein NIR-empfindlicher 1- oder 2-Kanal-GaAs-Detektor ermöglichen bis zu 6 Kanäle für Bildmultiplexing von Violett bis NIR (400 nm–890 nm).
TruFocus Red ermöglicht eine stabile und schonende NIR-Zeitraffer-Bildgebung.
X Line Objektive bieten die umfangreichste chromatische Korrektur (400 nm–1000 nm) für eine hervorragende Farbgenauigkeit bei mehrfarbiger Fluoreszenzbildgebung

(a)(b)

_{(a) Maus-mPFC mit Färbung des sauren Gliafaserproteins (GFAP; Astrozytenmarker; gelb), der Calmodulin-abhängigen Proteinkinase II (CaMKII; Pyramidenzellenmarker; rot), der Vorstufe des Amphoterin-induzierten-Proteins 1 (AMIGO-1; Marker für neuronale Membranen; cyan), von Parvalbumin (PV; Marker für inhibitorische Neuronen; violett), von Ankyrin-G (AnkG; Axon-Initialsegmentmarker; grün) und Nuclear Yellow (Marker für Zellkerne; blau).

Bildquelle: Stephanie Shiers, Doktorandin, und Theodore J. Price, Ph.D., Price Lab, Eugene McDermott Professor, Director, Center for Advanced Pain Studies, Department of Neurobiology, School of Behavioral and Brain Sciences, University of Texas in Dallas.

(b) Rattenhirnschnitt mit Hoechst (blau), Anti-IBA1 (Alexa Fluor 488; grün), Anti-MAP2 (Alexa Fluor 594, gelb), Anti-FOX3/NeuN (Alexa Fluor 647; rot) und Anti-MBP (Alexa Fluor 750; cyan). Die Bilder wurden mit einem UPLXAPO10X Objektiv mit Laserlinien von 405 nm, 488 nm, 561 nm und 730 nm und GaAsP- und GaAs-Detektoren aufgenommen. Maximale Intensitätsprojektion in Z mit TruSight Dekonvolutionsverarbeitung.

Bildquelle: EnCor Biotechnology.}

Makro- und Mikro-Beobachtung und Mikroskopie mit Superauflösung

Die Makro- und Mikro-Beobachtung des FV3000 ermöglichen eine Datenerfassung, bei der Sie die Daten im Kontext sehen und interessante Regionen für eine hochauflösende Bildgebung leicht lokalisieren können.

Verwenden Sie ein 1,25X- oder 2X-Objektiv mit geringer Vergrößerung, um schnell eine FOV-Karte (des großen Sichtfelds) von ganzen Proben aufzunehmen.
Identifizieren Sie interessante Bereiche auf der Overlay-Karte und wechseln Sie dann zu einem Objektiv mit höherer Vergrößerung für die hochauflösende konfokale Bildgebung bis 120 nm mit der Super Resolution-Technologie (FV-OSR) von Olympus.
Schließen Sie Ihre Bilderfassung ab und erstellen Sie publikationsreife Mikroskopbilder mit der TruSight Bildverarbeitung.

Weitere Informationen

Makro- und Mikro-Imaging und Mikroskopie mit Superauflösung

Eingebettete Maus-Hirnhälfte für die Expansionsmikroskopie (Prä-Expansion), markiert mit sekundären Antikörpern gegen GFP (Alexa Fluor 488, grün), SV2 (Alexa Fluor 565, rot), Homer (Alexa Fluor 647, blau).
Bildquelle: Dr. Ed Boyden und Dr. Fei Chen, MIT.

Makro- und Mikro-Imaging und Mikroskopie mit Superauflösung

Dendriten (Anti-GFP Alexa Fluor 488, grün) und synaptischer Marker (SV2, Alexa Fluor 565, rot). Mit Olympus Super Resolution aufgenommenes Bild, Verarbeitung mit der eingeschränkten iterativen Dekonvolution von cellSens Durchschnittliche Messungen der Halbwertsbreite bei ~135 nm. Bild aufgenommen mit einem 100X 1,35 NA Silikonöl-Immersionsobjektiv.
Bildquelle: Dr. Ed Boyden und Dr. Fei Chen, MIT.

Hybrid-Scanning für Hochgeschwindigkeitsbildgebung und höhere Produktivität Im FV3000 Hybridscanner sind für erweiterte konfokale Bildgebungsfunktionen zwei Scanner in einem kombiniert. Die Hybridscannereinheit FV3000RS arbeitet mit einem Galvanometerscanner für die Präzisionsabtastung sowie einem Resonanzscanner, ideal für die Hochgeschwindigkeitsbildgebung von physiologischen Live-Ereignissen. Mit dem Resonanzscanner werden Bilder mit hoher Bildrate in einem großen Sichtfeld mit bis zu 30 F/s bei FN 18 sowie mit bis zu 438 F/s mittels Clip-Scanning erfasst. Der Resonanzscanner eignet sich, um schnelle, dynamische Phänomene zu beobachten, z. B. ein schlagendes Herz, den Blutfluss oder Calciumionen (Ca2+) im Inneren von Zellen. Die Umschaltung zwischen Galvanometerscanner und Resonanzscanner erfolgt mit einem Klick. Weitere Informationen	Related Videos

Hybrid-Scanning für Hochgeschwindigkeitsbildgebung und höhere Produktivität

Im FV3000 Hybridscanner sind für erweiterte konfokale Bildgebungsfunktionen zwei Scanner in einem kombiniert.

Die Hybridscannereinheit FV3000RS arbeitet mit einem Galvanometerscanner für die Präzisionsabtastung sowie einem Resonanzscanner, ideal für die Hochgeschwindigkeitsbildgebung von physiologischen Live-Ereignissen.
Mit dem Resonanzscanner werden Bilder mit hoher Bildrate in einem großen Sichtfeld mit bis zu 30 F/s bei FN 18 sowie mit bis zu 438 F/s mittels Clip-Scanning erfasst.
Der Resonanzscanner eignet sich, um schnelle, dynamische Phänomene zu beobachten, z. B. ein schlagendes Herz, den Blutfluss oder Calciumionen (Ca2+) im Inneren von Zellen.
Die Umschaltung zwischen Galvanometerscanner und Resonanzscanner erfolgt mit einem Klick.

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Related Videos	Präzise Zeitrafferaufnahmen Zeitraffer-Experimente erfordern einen konstanten Fokus und eine geringe Phototoxizität für die Probe. Die TruFocus Einheit von Olympus erleichtert die Fokussierung während der Bildgebung von lebenden Zellen trotz Temperaturschwankungen oder zugesetzten Reagenzien. Der hochempfindliche Detektor des FV3000 benötigt deutlich weniger Laserleistung, und der Resonanzscanner reduziert die Laserbelichtungszeit und Phototoxizität, wenn physiologisch genauere konfokale Bilddaten erfasst werden müssen. Weitere Informationen

Präzise Zeitrafferaufnahmen

Zeitraffer-Experimente erfordern einen konstanten Fokus und eine geringe Phototoxizität für die Probe.

Die TruFocus Einheit von Olympus erleichtert die Fokussierung während der Bildgebung von lebenden Zellen trotz Temperaturschwankungen oder zugesetzten Reagenzien.
Der hochempfindliche Detektor des FV3000 benötigt deutlich weniger Laserleistung, und der Resonanzscanner reduziert die Laserbelichtungszeit und Phototoxizität, wenn physiologisch genauere konfokale Bilddaten erfasst werden müssen.

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Beobachtung tief liegender Gewebeschichten mit Silikonöl-Immersionsobjektiven Der Brechungsindex von Silikonöl unterscheidet sich nur wenig von lebendem Gewebe und ermöglicht eine hochauflösende Beobachtung tief im Gewebe bei minimaler sphärischer Aberration. Durch die Anpassung des Brechungsindex ergeben sich ein ideales Fokusvolumen und damit eine perfekte Volumenrekonstruktion, sodass eine hochauflösende konfokale Bildgebung großer lebender Organismen möglich ist. Lange Arbeitsabstände ermöglichen eine detaillierte mikroskopische Aufnahme in der Tiefe Erleben Sie, wie Daten in Echtzeit entstehen, und beobachten Sie Strukturen bequem mit der 3D-Rekonstruktionssoftware Weitere Informationen	_{3D-Bild eines Kükenziliarganglions nach Reinigung mit einem Gewebe-Reinigungsreagenz. Bildquelle: Dr. Ryo Egawa. Tohoku University Graduate School of Life Science.}

Beobachtung tief liegender Gewebeschichten mit Silikonöl-Immersionsobjektiven

Der Brechungsindex von Silikonöl unterscheidet sich nur wenig von lebendem Gewebe und ermöglicht eine hochauflösende Beobachtung tief im Gewebe bei minimaler sphärischer Aberration.

Durch die Anpassung des Brechungsindex ergeben sich ein ideales Fokusvolumen und damit eine perfekte Volumenrekonstruktion, sodass eine hochauflösende konfokale Bildgebung großer lebender Organismen möglich ist.
Lange Arbeitsabstände ermöglichen eine detaillierte mikroskopische Aufnahme in der Tiefe
Erleben Sie, wie Daten in Echtzeit entstehen, und beobachten Sie Strukturen bequem mit der 3D-Rekonstruktionssoftware

Weitere Informationen

_{3D-Bild eines Kükenziliarganglions nach Reinigung mit einem Gewebe-Reinigungsreagenz.

Bildquelle: Dr. Ryo Egawa. Tohoku University Graduate School of Life Science.}

Automatisierte Bildgebung von Organoiden

Der Arbeitsablauf für die Bildgebung von Organoiden kann von der Suche nach Zielobjekten bis zur Aufnahme hochauflösender 3D-Bilder sehr zeitaufwändig sein, insbesondere, wenn mehrere Wells einer Mikroplatte abgebildet werden. Das Makro-Mikro-Modul für das FV3000 System ist eine intelligente Lösung, die den Arbeitsablauf bei der Darstellung von Organoiden automatisiert und so die Effizienz der Bildgebung drastisch erhöht.

Das FV3000 Mikroskop nimmt Bilder mit geringer Vergrößerung auf. Anschließend kann das Makro-Mikro-Softwaremodul automatisch die Objekte von Interesse im Behälter oder im Well lokalisieren und sie mit hoher Vergrößerung aufnehmen. Durch diesen automatisierten Prozess wird der Aufwand zur Bedienung des Mikroskops drastisch reduziert.

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Automatisierte Makro-Mikro-Bildgebung

Angewandte Technologien

TruSpectral Erkennung

Das bahnbrechende TruSpectral-Erkennungsverfahren liefert im Gegensatz zu früheren Generationen von Spektralerkennungseinheiten hervorragende Ergebnisse und kombiniert auf jedem Kanal des FV3000 die Flexibilität eines Spektraldetektors mit der Empfindlichkeit eines Filterdetektors.

Empfindlichkeit und Genauigkeit

Verbesserte Quanteneffizienz

Funktionsweise des TruSpectral-Erkennungsverfahrens

Die hohe Effizienz der TruSpectal-Erkennung wird durch die patentierte Volumenphasen-Hologrammübertragung (VPH) und den einstellbaren Spalt erreicht. Die Erkennungswellenlängen jedes einzelnen Kanals können bis auf 2 nm genau ausgewählt werden.

Empfindlichkeit und Genauigkeit

Das in alle konfokalen Mikroskope FV3000 integrierte TruSpectral-Erkennungsverfahren ermöglicht einen deutlich höheren Lichtdurchsatz als herkömmliche spektrale Erkennungseinheiten: Das Volumenphasenhologramm beugt Licht mit bis zu dreifach höherer Transmissionseffizienz als Reflexionsgitter und liefert hervorragende mehrfarbige Fluoreszenzmikroskopiebilder von lebenden und fixierten Geweben.

Verbesserte Quanteneffizienz

Die HSD-Einheit (für den hochempfindlichen Detektor) des Mikroskops FV3000 ermöglicht die Anzeige von Proben, deren Emissionen für konventionelle Detektoren zu schwach sind. Die HSD-Einheit verfügt über zwei GaAsP-Kanäle mit einer maximalen Quanteneffizienz von 45 % und Peltierkühlung, die das Hintergrundrauschen um 20 % reduziert. Dadurch lassen sich Bilder mit hohem Signal-Rausch-Abstand auch bei sehr geringem Anregungslicht erfassen. HSD-Einheiten können auch kombiniert werden, wenn eine Vierkanal-GaAsP-Bildgebung mit dem FV3000-System benötigt wird.

. ,	Mehrkanalige TruSpectral-Erkennung mit 16-Kanal-Entmischung Die TruSpectral Erkennung arbeitet unabhängig auf allen Mikroskopkanälen und ermöglicht eine echte simultane mehrkanalige Lambda-Abtastung auf bis zu vier Kanälen. Der Mehrkanal-Lambdamodus liefert durch seine Spektralentmischung bei Live-Bildern und Bildnachbearbeitung hervorragende spektrale Separationsergebnisse. Mit bis zu vier Dynamikbereichen lassen sich Helligkeit und Dimmersignale durch unabhängige Anpassung der Empfindlichkeit jedes Detektors optimal trennen.

Empfindlichkeitseinstellung der einzelnen Kanäle

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Mehrkanalige TruSpectral-Erkennung mit 16-Kanal-Entmischung

Die TruSpectral Erkennung arbeitet unabhängig auf allen Mikroskopkanälen und ermöglicht eine echte simultane mehrkanalige Lambda-Abtastung auf bis zu vier Kanälen. Der Mehrkanal-Lambdamodus liefert durch seine Spektralentmischung bei Live-Bildern und Bildnachbearbeitung hervorragende spektrale Separationsergebnisse. Mit bis zu vier Dynamikbereichen lassen sich Helligkeit und Dimmersignale durch unabhängige Anpassung der Empfindlichkeit jedes Detektors optimal trennen.

Spektrale Entmischung

Mit dem spektralen Dekonvolutionsalgorithmus des FV3000 können sich überlappende Spektren anhand der Spektralinformationen aus Lambda-Stapelbildern getrennt und gegenseitige Fluoreszenzstörungen zwischen den Kanälen durch den Entmischungsalgorithmus sowohl bei der Live-Bildaufnahme als auch bei der Nachbearbeitung eliminiert werden, sodass eine saubere Trennung von bis zu sechzehn Fluorophoren möglich ist.

Spektrale Entmischung

Spektrale Entmischung einer PtK2-Zelle, die mit YOYO-1, Alexa Fluor 488, Rhodamin-Phalloidin und MitoTracker Red markiert ist, in einem Mehrkanal-Lambda-Stapelbild.

. , An eine Thrombose im Blutgefäß einer Maus gebundene Thrombozyten: Die Bilder wurden mit 30 fps im Vollbildmodus von einem Resonanzscanner mit 2 CH GaAsP PMTs aufgenommen. Bildquelle: Dr. Takuya Hiratsuka, Dr. Michiyuki Matsuda, Graduate School of Biostudies, Kyoto University.	Zwei Scanneroptionen Wählen Sie zwischen zwei Scannereinheiten: einem herkömmlichen Galvanometerscanner (FV3000) und einem Hybrid-Galvanometer/Resonanzscanner (FV3000RS). Mit dem Galvanometerscanner und der Olympus Super Resolution Technology (FV-OSR) werden Auflösungen bis zu 120 nm mit einem hohen Signal-Rausch-Abstand erreicht Die Galvanometer-Einheit bietet flexible Scanoptionen, einschließlich präziser Tornadoabtastung sowie Mehrpunktstimulation mit 100 ms Umschaltzeit Die Hybrid-Scaneinheit verfügt sowohl über einen Galvanometerscanner für die hochpräzise Abtastung als auch über einen Resonanzscanner für die Hochgeschwindigkeitsbilderfassung Der Resonanz-Scanner ermöglicht Aufnahmen des vollen Sichtfelds mit 30 Bildern pro Sekunde und 512 × 512 Pixeln oder bei Anpassung der Y-Achse Aufnahmen von Clips mit bis zu 438 Bildern pro Sekunde, beispielsweise von kritischen physiologischen Ereignissen wie dem Calciumionenfluss Keine Kompromisse zwischen Geschwindigkeit und Sichtfeld Viele Hochgeschwindigkeits-Abtastverfahren beschränken das Sichtfeld und erschweren damit die Untersuchung großer Areale mit mehreren Zellen. Der Resonanzscanner des Mikroskops FV3000RS behält mit FN 18 auch bei einer Videorate von 30 Bildern pro Sekunde ein volles 1X-Sichtfeld bei und ermöglicht durch Anpassung der Y-Achse Aufnahmegeschwindigkeiten von bis zu 438 Bildern pro Sekunde.

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An eine Thrombose im Blutgefäß einer Maus gebundene Thrombozyten: Die Bilder wurden mit 30 fps im Vollbildmodus von einem Resonanzscanner mit 2 CH GaAsP PMTs aufgenommen.
Bildquelle: Dr. Takuya Hiratsuka, Dr. Michiyuki Matsuda, Graduate School of Biostudies, Kyoto University.

Zwei Scanneroptionen

Wählen Sie zwischen zwei Scannereinheiten: einem herkömmlichen Galvanometerscanner (FV3000) und einem Hybrid-Galvanometer/Resonanzscanner (FV3000RS).

Mit dem Galvanometerscanner und der Olympus Super Resolution Technology (FV-OSR) werden Auflösungen bis zu 120 nm mit einem hohen Signal-Rausch-Abstand erreicht
Die Galvanometer-Einheit bietet flexible Scanoptionen, einschließlich präziser Tornadoabtastung sowie Mehrpunktstimulation mit 100 ms Umschaltzeit
Die Hybrid-Scaneinheit verfügt sowohl über einen Galvanometerscanner für die hochpräzise Abtastung als auch über einen Resonanzscanner für die Hochgeschwindigkeitsbilderfassung
Der Resonanz-Scanner ermöglicht Aufnahmen des vollen Sichtfelds mit 30 Bildern pro Sekunde und 512 × 512 Pixeln oder bei Anpassung der Y-Achse Aufnahmen von Clips mit bis zu 438 Bildern pro Sekunde, beispielsweise von kritischen physiologischen Ereignissen wie dem Calciumionenfluss

Keine Kompromisse zwischen Geschwindigkeit und Sichtfeld

Viele Hochgeschwindigkeits-Abtastverfahren beschränken das Sichtfeld und erschweren damit die Untersuchung großer Areale mit mehreren Zellen. Der Resonanzscanner des Mikroskops FV3000RS behält mit FN 18 auch bei einer Videorate von 30 Bildern pro Sekunde ein volles 1X-Sichtfeld bei und ermöglicht durch Anpassung der Y-Achse Aufnahmegeschwindigkeiten von bis zu 438 Bildern pro Sekunde.

Verarbeitung unter Verwendung des gleitenden Mittelwerts Die Hochgeschwindigkeitsabtastung mit geringer Laserleistung minimiert zwar die Fototoxizität, verringert aber oft den Signal-Rausch-Abstand, was die Aufnahme hochauflösender Zeitraffer-Bilder erschwert. Mit der Verarbeitung unter Verwendung des gleitenden Mittelwerts können Sie Hochgeschwindigkeits-Zeitraffer-Bilder anpassen und bessere Signal-Rausch-Abstände erzielen, ohne die Zeitskala oder die Originaldaten zu verändern.	(Links) Rohdaten mit 30 fps, die bei geringer Laserleistung (0,05 %, 488 nm) erfasst wurden. (Rechts) Verarbeitung unter Verwendung des gleitenden Mittelwerts (10 Einzelbilder) bei Daten mit 30 fps, die mit geringer Laserleistung erfasst wurden.

Verarbeitung unter Verwendung des gleitenden Mittelwerts

Die Hochgeschwindigkeitsabtastung mit geringer Laserleistung minimiert zwar die Fototoxizität, verringert aber oft den Signal-Rausch-Abstand, was die Aufnahme hochauflösender Zeitraffer-Bilder erschwert. Mit der Verarbeitung unter Verwendung des gleitenden Mittelwerts können Sie Hochgeschwindigkeits-Zeitraffer-Bilder anpassen und bessere Signal-Rausch-Abstände erzielen, ohne die Zeitskala oder die Originaldaten zu verändern.

Verarbeitung unter Verwendung des gleitenden Mittelwerts

(Links) Rohdaten mit 30 fps, die bei geringer Laserleistung (0,05 %, 488 nm) erfasst wurden.
(Rechts) Verarbeitung unter Verwendung des gleitenden Mittelwerts (10 Einzelbilder) bei Daten mit 30 fps, die mit geringer Laserleistung erfasst wurden.

	Makro- und Mikro-Beobachtung Siehe dazu die Daten zur Makro- und Mikro-Beobachtung. Mit dem überarbeiteten Lichtweg des FV3000 erzeugen Sie detaillierte Übersichtsbilder mit Vergrößerungen von bis zu 1,25X, und erkennen mühelos auch solche Strukturen, zu deren Darstellung eigentlich eine höhere Vergrößerung erforderlich ist. Mit der Mosaikbildgebung können Sie kontinuierlich 3D- (XYZ) und 4D-Bilder (XYZT) von angrenzenden Sichtfeldern aufnehmen. Der gesamte Prozess von der Bilderfassung bis zum Stitching kann vollständig automatisiert werden, was Zeit spart und aussagekräftigere Daten erzeugt.

Makro- und Mikro-Beobachtung

Siehe dazu die Daten zur Makro- und Mikro-Beobachtung. Mit dem überarbeiteten Lichtweg des FV3000 erzeugen Sie detaillierte Übersichtsbilder mit Vergrößerungen von bis zu 1,25X, und erkennen mühelos auch solche Strukturen, zu deren Darstellung eigentlich eine höhere Vergrößerung erforderlich ist. Mit der Mosaikbildgebung können Sie kontinuierlich 3D- (XYZ) und 4D-Bilder (XYZT) von angrenzenden Sichtfeldern aufnehmen. Der gesamte Prozess von der Bilderfassung bis zum Stitching kann vollständig automatisiert werden, was Zeit spart und aussagekräftigere Daten erzeugt.

TruSight Dekonvolution: Bildverarbeitung für höhere Auflösung Entfernen Sie Unschärfen und erhalten Sie klarere, schärfere Bilder mit der TruSight-Dekonvolution. Spezielle cellSens-Algorithmen für das konfokale Mikroskop FV3000 ermöglichen einen nahtlosen Workflow von der Aufnahme bis zur Veröffentlichung per Tastendruck. Noch schnellere Ergebnisse erhalten Sie durch die GPU-Verarbeitung.	Links: Konfokales Rohbild/Rechts: Bild mit TruSight . ,

TruSight Dekonvolution: Bildverarbeitung für höhere Auflösung

Entfernen Sie Unschärfen und erhalten Sie klarere, schärfere Bilder mit der TruSight-Dekonvolution. Spezielle cellSens-Algorithmen für das konfokale Mikroskop FV3000 ermöglichen einen nahtlosen Workflow von der Aufnahme bis zur Veröffentlichung per Tastendruck. Noch schnellere Ergebnisse erhalten Sie durch die GPU-Verarbeitung.

Links: Konfokales Rohbild/Rechts: Bild mit TruSight

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. ,	Olympus Super Resolution (FV-OSR) Technologie mit bis zu vier simultanen Kanälen Das für die Kolokalisationsanalyse geeignete Super Resolution-Bildmodul von Olympus kann vier Fluoreszenzsignale entweder sequentiell oder gleichzeitig mit einer Auflösung von ca. 120 nm erfassen und damit die Auflösung typischer Konfokalmikroskope nahezu verdoppeln. Es werden keine speziellen Fluorophore benötigt, das Modul unterstützt eine Vielzahl von Proben Einfache Bedienung nach kurzer Einweisung Ergänzen Sie FV-OSR bei jedem konfokalen Mikroskopsystem FV3000, um eine Mikroskopie mit Superauflösung zu erreichen Erfahren Sie mehr über das Super Resolution-Softwaremodul des FV3000

0,5 AU Konfokales Bild nach Dekonvolution mit cellSens Advanced Deconvolution

Super Resolution und cellSens Advanced Deconvolution von Olympus: Beachten Sie die klare Trennung der Punktfärbungen mit OSR.

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Olympus Super Resolution (FV-OSR) Technologie mit bis zu vier simultanen Kanälen

Das für die Kolokalisationsanalyse geeignete Super Resolution-Bildmodul von Olympus kann vier Fluoreszenzsignale entweder sequentiell oder gleichzeitig mit einer Auflösung von ca. 120 nm erfassen und damit die Auflösung typischer Konfokalmikroskope nahezu verdoppeln.

Es werden keine speziellen Fluorophore benötigt, das Modul unterstützt eine Vielzahl von Proben
Einfache Bedienung nach kurzer Einweisung
Ergänzen Sie FV-OSR bei jedem konfokalen Mikroskopsystem FV3000, um eine Mikroskopie mit Superauflösung zu erreichen

Erfahren Sie mehr über das Super Resolution-Softwaremodul des FV3000

TruFocus-Zeitraffer-Bildgebung Die TruFocus Technologie macht Multipositionsexperimente und Langzeit-Zeitrafferbildgebung robuster und zuverlässiger. Sie bestimmt mit einem minimal fototoxischen Infrarotlaser (Klasse 1) die Probenebene und bietet zwei Modi zur Aufrechterhaltung der Fokussierung. Im Einzelbild-Autofokus-Modus (AF) können Sie mehrere Fokuspositionen einstellen und erreichen so eine effiziente Z-Stapelerfassung bei Experimenten mit mehreren Positionen Der kontinuierliche AF-Modus hält die gewünschte Beobachtungsebene ständig präzise im Fokus. Damit eignet er sich ideal für Zeitraffer-Messungen, da eine Fokusdrift aufgrund von Temperaturänderungen oder zugesetzten Reagenzien verhindert wird TruFocus ist mit verschiedenen Konfigurationen zur konfokalen Bildverarbeitung kompatibel, einschließlich solchen mit Trockenobjektiven, Kunststoffbehältern und Silikonöl-Immersionsobjektiven	Related Videos

TruFocus-Zeitraffer-Bildgebung

Die TruFocus Technologie macht Multipositionsexperimente und Langzeit-Zeitrafferbildgebung robuster und zuverlässiger. Sie bestimmt mit einem minimal fototoxischen Infrarotlaser (Klasse 1) die Probenebene und bietet zwei Modi zur Aufrechterhaltung der Fokussierung.

Im Einzelbild-Autofokus-Modus (AF) können Sie mehrere Fokuspositionen einstellen und erreichen so eine effiziente Z-Stapelerfassung bei Experimenten mit mehreren Positionen
Der kontinuierliche AF-Modus hält die gewünschte Beobachtungsebene ständig präzise im Fokus. Damit eignet er sich ideal für Zeitraffer-Messungen, da eine Fokusdrift aufgrund von Temperaturänderungen oder zugesetzten Reagenzien verhindert wird
TruFocus ist mit verschiedenen Konfigurationen zur konfokalen Bildverarbeitung kompatibel, einschließlich solchen mit Trockenobjektiven, Kunststoffbehältern und Silikonöl-Immersionsobjektiven

Konventionelle Objektive (links) und X Line Objektive (rechts)	Leistungsstarke mikroskopische Bildgebung mit X-Line Objektiven Mit ihrer breiten chromatischen Aberrationskorrektur, gleichmäßigen Bildern und der hohen numerischen Apertur verbessern die X-Line-Objektive die Bildqualität des konfokalen Mikroskops FV3000. Mehr erfahren

Konventionelle Objektive (links) und X Line Objektive (rechts)

Leistungsstarke mikroskopische Bildgebung mit X-Line Objektiven

Mit ihrer breiten chromatischen Aberrationskorrektur, gleichmäßigen Bildern und der hohen numerischen Apertur verbessern die X-Line-Objektive die Bildqualität des konfokalen Mikroskops FV3000.

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Beobachtung tief liegender Gewebeschichten mit Silikonöl-Immersionsobjektiven

Olympus bietet vier Silikonöl-Immersionsobjektive mit hohem NA-Wert an, die sich hervorragend zur Bildgebung von lebenden Zellen eignen.

Der Brechungsindex von Silikonöl (ne≈1,40) entspricht fast dem von lebendem Gewebe (ne≈1,38) und ermöglicht hochauflösende Beobachtungen tief im lebenden Gewebe mit minimaler sphärischer Aberration
Silikonöl trocknet nicht aus und verharzt nicht, sodass bei längeren Zeitrafferbeobachtungen kein Öl nachgefüllt werden muss

. ,	Verbessern Sie die Zuverlässigkeit der Kolokalisationsanalyse mit einem Objektiv mit geringer chromatischer Aberration (PLAPON60XOSC2) Dieses Silikonöl-Immersionsobjektiv minimiert die laterale und axiale chromatische Aberration im Bereich von 405–650 nm, ermöglicht die zuverlässig Aufnahme von Kolokalisationsbildern, die positionsgenaue Messung von Objekten sowie die Kompensation der chromatischen Aberration im nahen Infrarotbereich (bis 850 nm) und eignet sich daher ideal für die quantitative Mikroskopie. Vergrößerung: 60X NA: 1,4 (Ölimmersion) BTH: 0,12 mm Kompensationsbereich der chromatischen Aberration: 405–650 nm Optische Daten für jedes Objektiv verfügbar

Vergleich der Eigenschaften des PLAPON60XOSC2 und des UPLXAPO60XOO

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Verbessern Sie die Zuverlässigkeit der Kolokalisationsanalyse mit einem Objektiv mit geringer chromatischer Aberration (PLAPON60XOSC2)

Dieses Silikonöl-Immersionsobjektiv minimiert die laterale und axiale chromatische Aberration im Bereich von 405–650 nm, ermöglicht die zuverlässig Aufnahme von Kolokalisationsbildern, die positionsgenaue Messung von Objekten sowie die Kompensation der chromatischen Aberration im nahen Infrarotbereich (bis 850 nm) und eignet sich daher ideal für die quantitative Mikroskopie.

Vergrößerung: 60X
NA: 1,4 (Ölimmersion)
BTH: 0,12 mm
Kompensationsbereich der chromatischen Aberration: 405–650 nm
Optische Daten für jedes Objektiv verfügbar

Optimierte Konfigurationen für elektrophysiologische Experimente

Synchronisieren Sie konfokale Bildgebungsereignisse mit elektrophysiologischen Geräten über die Triggersignal-I/O-Anschlussbox. Die I/O-Anschlussbox wandelt auch Spannungssignale in Bilder um, die genauso verarbeitet werden können wie Fluoreszenzbilder. Auf diese Weise können Sie spannungsabhängige Bilder synchron zur Fotostimulation mit dem konfokalen Scanner aufnehmen.

Mehr über die IO-Anschlussbox erfahren

Software

Intuitive Software Die FV3000-Software rationalisiert den gesamten Workflow der konfokalen Bildgebung von der Erfassung bis zur Analyse: Individuell anpassbare und speicherbare Layouts erleichtern die Anpassung der Benutzeroberfläche an Ihren Workflow und Ihre Experimente unabhängig vom Grad der Komplexität.

Intuitive Software

Die FV3000-Software rationalisiert den gesamten Workflow der konfokalen Bildgebung von der Erfassung bis zur Analyse: Individuell anpassbare und speicherbare Layouts erleichtern die Anpassung der Benutzeroberfläche an Ihren Workflow und Ihre Experimente unabhängig vom Grad der Komplexität.

Intuitive Software

Echtzeit-3D-Rendering und Analyse

Mit der Echtzeit-3D-Bildanzeigefunktion der FV3000 Software können Sie Ihre Daten in Echtzeit sehen. 3D-Bilder können während der Bilderfassung erstellt und als Echtzeit-Bilder angezeigt werden.

Mit der optionalen NoviSight Software sind zusätzlich 3D-Zellanalysen möglich. Nutzen Sie die leistungsstarken Softwarefunktionen zur Quantifizierung von Sphäroidzellen oder anderen 3D-Objekten für Untersuchungen auf Mikrotiterplatten.

Mehr erfahren

Fucci-induziertes Sphäroid der HT29-Zelllinie

Fucci-induziertes Sphäroid der HT29-Zelllinie
Bildquelle: Yuji Mishima, Ph.D., Kiyohiko Hatake M.D., Ph.D. Clinical Chemotherapy, Cancer Chemotherapy Center, Japanese Foundation for Cancer Research.

Mit der optionalen NoviSight Software lassen sich verschiedene 3D-Zellanalysen durchführen.

Zeitraffer für mehrere Bereiche und Mikrotiterplatten-Bildgebung Das Zeitraffer-Modul für mehrere Bereiche (Multi-Area Time-Lapse - MATL) liefert robuste und genaue Zeitrafferdaten durch präzise Steuerung der motorisierten Tischbewegungen, sodass Sie detaillierte Übersichtsmikroskopbilder erzeugen können, um Daten im Kontext zu sehen. Kombinieren Sie das MATL-Modul mit dem Mikrotiterplatten-Navigatormodul, um durch die moderne, intuitive Steuerung eine erweiterte Funktionalität für diverse Zellkulturgefäße und kundenspezifische Mikrotiterplatten zu erreichen.

Zeitraffer für mehrere Bereiche und Mikrotiterplatten-Bildgebung

Das Zeitraffer-Modul für mehrere Bereiche (Multi-Area Time-Lapse - MATL) liefert robuste und genaue Zeitrafferdaten durch präzise Steuerung der motorisierten Tischbewegungen, sodass Sie detaillierte Übersichtsmikroskopbilder erzeugen können, um Daten im Kontext zu sehen. Kombinieren Sie das MATL-Modul mit dem Mikrotiterplatten-Navigatormodul, um durch die moderne, intuitive Steuerung eine erweiterte Funktionalität für diverse Zellkulturgefäße und kundenspezifische Mikrotiterplatten zu erreichen.

Zeitraffer für mehrere Bereiche und Mikrotiterplatten-Bildgebung

Reduzieren Sie Komplexität mit dem Sequence Manager.

Das Sequence Manager Softwaremodul verarbeitet problemlos komplexe Protokolle: Mehrtägige Zeitraffer-Experimente werden mikrosekundengenau abgetastet und Sequenzen millisekundengenau ausgeführt. Es lassen sich verschiedene komplexe Protokolle ausführen, beispielsweise:

Umschaltung zwischen hoher und niedriger Vergrößerung
Zeitraffer-Experimente mit variabler Intervallzeit
Fotostimulation zwischen den Aufnahmen durch FRAP oder FRET (Akzeptor-Fotobleiche)

Reduzieren Sie Komplexität mit dem Sequence Manager

Quantitative Mikroskopie-Bildanalyse

Das konfokale Mikroskop FV3000 verfügt über eine Reihe optionaler Analysefunktionen, die Ihren Workflow bei der Bildverarbeitung ergänzen und quantitative Daten liefern.

Zählen und Messen: Berechnung der Anzahl, Größe, Leuchtkraft und Morphologie von Zellsegmenten
Kolokalisierung: Analyse von sich überlappenden Fluoreszenzspektren

Zählen und Messen

Zählen und Messen
Bild mit freundlicher Genehmigung von: Hidetaka Kosako, Fujii Memorial Institute of Medical Sciences, Tokushima University

Kolokalisierung

FRET- und FRAP-Experimente

Das Mikroskop FV3000 ermöglicht in Verbindung mit dem cellSens Life Science Analysemodul eine einfache Erfassung und Analyse von FRET- und FRAP-Experimenten.

FRAP: Bestimmung von τ/2 und der mobilen/immobilen Fraktion durch Anpassung der Kurve der Helligkeitsänderung durch Fluoreszenzwiederherstellung nach Fotobleichung
FRET: Messung der FRET-Effizienz durch Akzeptor-Fotobleiche, Fluoreszenzverhältnis-Imaging und sensibilisierte Emission

Beispiel für eine FRET-Analyse (Akzeptor-Fotobleiche)

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Beispiel für eine FRET-Analyse (Akzeptor-Fotobleiche)

Beispiel für eine FRAP-Analyse

Fluoreszenzverhältnis-Bildgebung und intensitätsmodulierte Darstellung (IMD)

Die Analysesoftware für die Fluoreszenzverhältnis-Bildgebung des FV3000-Mikroskops enthält eine Funktion zur intensitätsmodulierten Darstellung (IMD) quantitativer Fluoreszenzverhältnisänderungen sowohl bei Standard- als auch bei Hochgeschwindigkeitsaufnahmen, insbesondere bei der Calcium- und FRET-Bildgebung, wenn der Kontrast in Hintergrundbereichen bei bloßer Anzeige des Fluoreszenzverhältnisses unzureichend ist.

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tsGFP1-mito zeigt die Heterogenität der mitochondrialen Thermogenese in HeLa-Zellen.
Bilder der Fluoreszenzverhältnis-Bildgebung (ex 405 nm/ex 488 nm) in tsGFP1-mito-exprimierenden Zellen vor und nach der CCCP-Behandlung bei 37 °C. Die Skalenstriche entsprechen 10 μm (Gesamtbild) bzw. 3 μm (Bildeinsatz).
Bildquelle: Shigeki Kiyonaka Ph.D., Yasuo Mori Ph.D., Molecular Biology Field, Department of Synthetic Chemistry and Biological Chemistry, Kyoto University.

(Links) Unbehandeltes CFP/YFP-Verhältnis, (Rechts) IMD des CFP/YFP-Verhältnisses

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Herzmuskelzelle
Bildquelle: Yusuke Niino and Atsushi Miyawaki, Cell Function Dynamics, Brain Science Institute of RIKEN.

. , Biolumineszenz von RA-induzierten, sich differenzierenden Zellen an Tag 12 aus mit Bmal1:luc stabil transfizierten ES-Zellen Bildquelle: Kazuhiro Yagita, M.D. Ph.D. Department of Physiology and Systems Bioscience, Kyoto Prefectural University of Medicine Referenz: Proc Natl Acad Sci U S A. 107(8): 3846-3851 (2010)	Objektverfolgung Automatische Erkennung, Verfolgung und Analyse bewegter Objekte in Zeitrafferbildern mit dem cellSens Object Tracking-Modul. Mit der Tracking-Funktion steht ein leistungsstarkes und intuitives Tool zur Quantifizierung dynamischer Prozesse wie Zellbewegung und -teilung zur Verfügung.

Zeitabhängige Änderung der Zellintensität

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Biolumineszenz von RA-induzierten, sich differenzierenden Zellen an Tag 12 aus mit Bmal1:luc stabil transfizierten ES-Zellen
Bildquelle: Kazuhiro Yagita, M.D. Ph.D. Department of Physiology and Systems Bioscience, Kyoto Prefectural University of Medicine
Referenz: Proc Natl Acad Sci U S A. 107(8): 3846-3851 (2010)

Objektverfolgung

Automatische Erkennung, Verfolgung und Analyse bewegter Objekte in Zeitrafferbildern mit dem cellSens Object Tracking-Modul. Mit der Tracking-Funktion steht ein leistungsstarkes und intuitives Tool zur Quantifizierung dynamischer Prozesse wie Zellbewegung und -teilung zur Verfügung.

Development Kit für Fernsteuerung (RDK) Das Development Kit ermöglicht die Fernsteuerung und Programmierung bestimmter Mikroskopfunktionen des FV3000 in Sprachen wie Python, C++ und Matlab. Das RDK-Modul ist ein leistungsstarkes Tool für Anwender mit Programmiererfahrung, die das volle Potenzial des Systems erschließen möchten.

Development Kit für Fernsteuerung (RDK)

Das Development Kit ermöglicht die Fernsteuerung und Programmierung bestimmter Mikroskopfunktionen des FV3000 in Sprachen wie Python, C++ und Matlab. Das RDK-Modul ist ein leistungsstarkes Tool für Anwender mit Programmiererfahrung, die das volle Potenzial des Systems erschließen möchten.

* Obwohl sie zu einer der wichtigsten Zelllinien in der medizinischen Forschung wurde, müssen wir unbedingt anerkennen, dass Henrietta Lacks Beitrag zur Wissenschaft ohne ihre Zustimmung erfolgte. Diese Ungerechtigkeit führte nicht nur zu wichtigen Entdeckungen in der Immunologie, bei Infektionskrankheiten und Krebs, sondern warf auch wichtige Diskussionen über Datenschutz, Ethik und Einwilligung in der Medizin auf.
Um mehr über das Leben von Henrietta Lacks und ihren Beitrag zur modernen Medizin zu erfahren, klicken Sie hier.
http://henriettalacksfoundation.org/

Konfigurationen

Wählen Sie die Konfiguration, die zu Ihrer Anwendung passt

Inversmikroskop

Geeignet zur Beobachtung von Zellkulturen in Behältnissen
Die TruFocus Einheit ermöglicht Zeitrafferbeobachtungen mit gleichbleibendem Fokus
Ergänzen Sie einen Inkubator mit Tisch- oder Vollverkleidung, um die Umgebungsbedingungen von Zellkulturen aufrechtzuerhalten

Aufrechtes Mikroskop (konfiguriert für Objektträgeraufnahmen)

Optimiert für fixierte Gewebe und Objektträger aus Glas
Durch den motorisierten 7-fachen Objektivrevolver und Kondensator sind automatisierte Übergänge von niedriger zu hoher Vergrößerung sowie von der Makro- zur Mikro-Beobachtung möglich

Aufrechtes Mikroskop (konfiguriert für die Elektrophysiologie)

Ausreichend Platz um die Objektive herum ermöglicht eine einfache Installation von Patch-Clamp-Vorrichtungen
Zusätzlicher Platz durch Absenken der Tischposition für Experimente mit großen Proben
Schwenk- und Schiebevorsätze zum leichteren Wechsel der Objektive ohne Veränderung des Patch-Clamp-Aufbaus

Spezifikationen

		FV3000	FV3000RS
Hauptlaser-Strahlkombinierer	Laser im Bereich des sichtbaren Lichts	405 nm: 50 mW, 488 nm: 20 mW, 561 nm: 20 mW, 640 nm: 40 mW Ein optionaler Laseranschluss für den Sublaser-Strahlkombinierer oder eine optionale Lasereinheit
Optionaler Laser	Sublaser-Kombieinheit	Maximal 3 Lasereinheiten wie folgt: 445 nm: 75 mW, 514 nm: 40 mW, 594 nm: 20 mW, Faser verbunden mit dem Hauptlaser-Strahlkombinierer
	Einzelne Lasereinheit	445 nm: 75 mW, 514 nm: 40 mW oder 594 nm: 20 mW, direkt mit dem Hauptlaser-Strahlkombinierer verbunden
	Eine NIR-Lasereinheit	730 nm: 30 mW, 785 nm: 100 mW, über optionalen Port mit Scanner verbunden
Scanner	Scan-Methode	2 silberbeschichtete Galvanometer-Scannerspiegel	2 silberbeschichtete Galvanometer-Scannerspiegel 1 silberbeschichteter Resonanz- und 1 silberbeschichteter Galvanometer-Scannerspiegel
	Galvanometer-Scanner (Normale Bildgebung)	Scan-Auflösung: 64 × 64 bis 4096 × 4096 Pixel Scangeschwindigkeit (eine Richtung): 512 × 512 mit 1,1 s – 264 s. Pixelzeit: 2 µs – 1000 µs Scangeschwindigkeit (hin und zurück): 512 × 512 mit 63 ms – 250 ms, 256 × 256 mit 16 ms – 125 ms Optischer Zoom: 1X bis 50X in Schritten von 0,01X Scan-Rotation: freie Rotation (360 Grad) in Schritten von 0,1 Grad Scan-Modus: PT, XT, XZ, XY, XZT, XYT, XYZ, XYλ, XYZT, XYλT, XYλZ, XYλZT ROI-Scanning, Rechteckclip, Ellipse, Polygon, freier Bereich, Linie, freie Linie und Punkt, Tornado-Modus nur zur Stimulation
	Resonanz-Scanner (Hochgeschwindigkeitsbildgebung)	-	Scan-Auflösung: 512 × 32 bis 512 × 512 Pixel Scangeschwindigkeit: 30 F/s bei 512 × 512, 438 F/s bei 512 x 32 Optischer Zoom: 1X bis 8X in Schritten von 0,01X Scan-Modus: XT, XZ, XY, XZT, XYT, XYZ, XYλ, XYZT, XYλT, XYZ, XYλZT ROI-Scannen, Rechteck-Clip, Linie
	Lochblende	Einzelne motorisierte Lochblende, Lochblendendurchmesser ø 50 – 800 µm (in Schritten von 1 µm)
	Sehfeldzahl (FN)	18
	Dichroitisches Spiegelmodul (DM)	8 Positionen (Hochleistungs-DMs und 10/90-Spiegel)
	Optionale Einheit für Scanner	Laserleistungsüberwachung, optionaler Laseranschluss
Spektraler Detektor	Detektormodul	Gekühlter GaAsP-Photomultiplier (hochempfindlich) oder Multi-Alkali-Photomultiplier, 2 Kanäle
	Spektralverfahren	Motorgesteuertes, holografisches Volumenphasen-Beugungsgitter mit motorgesteuertem verstellbarem Spalt, wählbare Wellenlängenbandbreite: 1–100 nm, Wellenlängenauflösung: 2 nm
	Dichroitisches Spiegelmodul (DM)	8 Positionen (Hochleistungs-DMs und Spiegel)
NIR-Detektor	Detektormodul	GaAs-Photomultiplier-Röhre, 1 Kanal oder 2 Kanäle mit Filterwürfel
Fluoreszenz-Beleuchtungseinheit		Externe Fluoreszenzlichtquelle, Faseradapter für den optischen Anschluss der Abtasteinheit, motorisiertes Umschalten zwischen LSM-Lichtweg und Fluoreszenzbeleuchtung
Durchlicht-Detektoreinheit		Modul mit integriertem externen Durchlicht-Fotovervielfacher-Detektor und LED-Lampe, motorgesteuertes Umschalten

Mikroskop

	Inverses Stativ	Aufrechtes Stativ (für die Bildgebung)	Aufrechtes Stativ (für die Elektrophysiologie)
Mikroskopstativ	Motorgesteuertes inverses Mikroskop IX83 (IX83P2ZF)	Motorgesteuertes aufrechtes Mikroskop mit festem Tisch BX63L	Motorgesteuertes aufrechtes Mikroskop mit festem Tisch BX63L
Objektivrevolver	Motorgesteuerter Sechsfach-Objektivrevolver	Motorgesteuerter Siebenfach-Objektivrevolver	Codierter Schwenkrevolver Codierter Schieberrevolver
Kondensor	Motorgesteuerter Kondensor mit großem Arbeitsabstand	Motorgesteuerter Universalkondensor	Manuell verstellbarer Kondensor mit großem Arbeitsabstand
Fokussierungshub	Eingebauter motorgesteuerter Objektivrevolverfokus Hub: kleinste Schrittweite: 0,01 μm

Software

Grundfunktionen	Benutzerschnittstelle für Dunkelkammerumgebung ausgelegt. Vom Anwender veränderbares Layout. Ladefunktionen für Aufnahmeparameter. Festplattenaufzeichnung möglich, Anpassung der Laserleistung und HV bei Z-Stapelerfassung. Z-Stapel mit Alpha-Blending, Projektion mit maximaler Helligkeit, ISO-Oberflächen-Rendering.
2D-Bilddarstellung	Jede Bildanzeige: Einzelkanal nebeneinander, Zusammenfügen, Ausschneiden, Live-Kacheln, Live-Kachel, Serie (Z/T/λ), LUT: individuelle Farbeinstellung, Falschfarbe, Kommentar: Grafik- und Texteingabe.
3D-Visualisierung und -Beobachtung	Interaktives Volumen-Rendering: Volumen-Rendering-Anzeige, Projektionsanzeige, Animationsanzeige. 3D-Animation (Projektionsverfahren mit maximaler Intensität, α-Blending) 3D- und 2D-Sequenzbetriebsfunktion.
Bildformat	OIR-Bildformat 8/16-Bit Graustufen-/Indexfarbe, 24/32/48-Bit-Farbe, JPEG/BMP/TIFF-Bildfunktionen, Olympus Multi-TIF-Format.
Spektrale Entmischung	Fluoreszenzspektrum-Entmischungsmodi (bis zu 16 Kanäle)
Bildanalyse	Bereichs- und Linienmessungen, Intensitätsplot über Zeit/Z, Kolokalisierungsanalyse.
Statistische Verarbeitung	2D-Daten-Histogrammanzeige
Optionale Software	Motorsteuerung des Tisches Mapping und Mehrpunkt-Simulation Sequenzmanager Virtuelle Kanalerfassung Mikrotiterplatten-Navigation Remote Development Kit Bildgebung mit Superauflösung (FV-OSR) Digitalkamera-Steuerungsfunktion Dekonvolution FRET- und FRAP-Analyse Automatische Objektvermessung und Klassifizierung Objektverfolgung TruAI Deep-Learning-Technologie NoviSight 3D-Zellanalyse-Software Automatisierte Makro-Mikro-Bildgebung

FV3000

Übersicht

FLUOVIEW der nächsten Generation für die nächste Revolution in der Wissenschaft

Hochempfindliches Bildmultiplexing von Violett bis NIR-Licht

Makro- und Mikro-Beobachtung und Mikroskopie mit Superauflösung

Hybrid-Scanning für Hochgeschwindigkeitsbildgebung und höhere Produktivität

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Zwei Scanneroptionen

Keine Kompromisse zwischen Geschwindigkeit und Sichtfeld

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TruFocus-Zeitraffer-Bildgebung

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Software

Intuitive Software

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Reduzieren Sie Komplexität mit dem Sequence Manager.

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FRET- und FRAP-Experimente

Fluoreszenzverhältnis-Bildgebung und intensitätsmodulierte Darstellung (IMD)

Objektverfolgung

Development Kit für Fernsteuerung (RDK)

Konfigurationen

Wählen Sie die Konfiguration, die zu Ihrer Anwendung passt

Inversmikroskop

Aufrechtes Mikroskop (konfiguriert für Objektträgeraufnahmen)

Aufrechtes Mikroskop (konfiguriert für die Elektrophysiologie)

Komponenten

Software

Scanners

Spezifikationen

Mikroskop

Software

Redirecting